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摘要:目的 观察电针对阿尔茨海默病(AD)大鼠海马组织及血清中趋化因子单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)及基质细胞衍生因子-1(SDF-1)的影响,并探讨其作用机制。方法 将大鼠随机分为正常组、假手术组、模型组和电针组,通过双侧海马区微量注射β-淀粉样蛋白(Aβ)构建AD模型,采用Morris水迷宫检测空间学习和记忆能力的变化,ELISA检测海马组织及血清中MCP-1及SDF-1水平。结果 与模型组比较,电针组可明显改善AD大鼠学习记忆能力(P
关键词:电针;阿尔茨海默病;趋化因子;基质细胞衍生因子-1;单核细胞趋化蛋白-1;大鼠
DOI:10.3969/j.issn.1005-5304.2014.05.014
中图分类号:R245.11 文献标识码:A 文章编号:1005-5304(2014)05-0043-04
对该病的发病机制尚未完全阐明,缺乏特效治疗药物及治疗手段。针对AD复杂的多因素致病,针灸治疗具有多层面、多途径、多靶点作用的优势,对AD具有较好的治疗作用。趋化因子是一类对白细胞游走和活化具有重要作用的蛋白超家族,除在炎性反应中起重要作用外,还参与调控白细胞的迁移。趋化因子最初的研究主要局限于免疫系统,近年来其在神经系统中的作用不断受到重视,有关AD患者体内趋化因子水平改变的报道日益增多,并且许多趋化因子也已被证实参与AD的发展。本研究在构建AD大鼠模型的基础上,以电针进行治疗,评价行为和学习记忆功能的改变,并检测海马组织及血清中基质细胞衍生因子-1(SDF-1)和单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)的表达变化,明确电针对AD的治疗作用并初步探讨趋化因子在电针治疗AD中的作用机制。
1 实验材料
1.1 动物
雄性SPF级SD大鼠,体质量(200±50)g,上海中医药大学实验动物中心提供,动物许可证号:SCXK(沪)2008-0016。
1.2 主要试剂与仪器
Aβ1-40购自美国Sigma公司,大鼠MCP-1及SDF-1 ELISA试剂盒购自上海研谨生物科技有限公司,BCA蛋白浓度测定试剂盒购自上海碧云天生物科技研究所,其他试剂均为分析纯。脑立体定位仪(江湾I型)为第二军医大学生理教研室研制,Morris水迷宫为中国医学科学院研制,微量注射器购自瑞士Hamilton公司,针灸针购自吴江市云龙医疗器械有限公司,电针治疗仪购自常州英迪电子医疗器械有限公司。
2 实验方法
2.1 造模
以双侧海马区微量注射Aβ的方式构建AD大鼠模型[2]。10%水合氯醛(3.5 mL/kg)腹腔注射麻醉大鼠后,将头颅固定在脑立体定位仪上,头皮备皮,消毒手术区皮肤,做正中切口暴露前囟,参照大鼠脑立体定位图谱[3],以前囟为原点,向后3.5 mm、旁开2.0 mm为钻孔点,钻开对称2个孔,自脑表面进针3.0 mm至海马,用微量进样器抽取2 ?L(10 ?g)Aβ1-40(用无菌生理盐水将其稀释成5 ?g/?L,37 ℃孵育1周,使其变为聚集状态),每点注射Aβ1-40 1 ?L(5 ?g),缓慢进针,注射速度0.2 ?L/min,注射完毕,停针5.0 min后,以1.0 mm/min 速度缓慢拔针,明胶海绵填塞颅骨孔,缝合皮肤,术后肌肉注射青霉素8 万U,连续3 d,以防感染。假手术组注射等量生理盐水。
2.2 分组与治疗
7 d伤口完全愈合后,饮食正常,无肢体残疾,即开始治疗。实验分为正常组、假手术组、模型组、电针组,每组8只。电针组按实验动物大鼠穴位图谱[3]取“百会”(顶骨正中)及“肾俞”(第2腰椎下两旁),用普通28号13 mm不锈钢毫针,“百会”平刺约2.5 mm;双侧“肾俞”直刺约4 mm。连接G6805A型电针治疗仪,选择连续波,频率为20 Hz,强度以肢体抖动,且大鼠能安静耐受为度。针刺治疗每日1次,每次30 min,7 d为1个疗程,疗程间休息1 d,治疗4个疗程。正常组、空白组及模型组正常饲养,不予针刺治疗。
2.3 大鼠学习记忆能力检测
采用Morris水迷宫,通过测定各组大鼠逃避潜伏期和通过原平台的次数,来检测大鼠空间学习和记忆能力的变化[4]。连续5 d,记录逃避潜伏期。实验第6日撤除平台,将大鼠面向池壁从任一入水点放入水池,测试70 s内跨越原平台位置的次数和原象限停留时间。
2.4 海马组织和血清中基质细胞衍生因子-1和单核细胞趋化蛋白-1表达检测
Morris水迷宫检测结束后,眼眶后静脉丛穿刺采血并分离血清。大鼠处死后快速取出海马组织,提取总蛋白并以BCA法对蛋白进行定量,采用ELISA检测,操作严格按照试剂盒说明书进行。
3 统计学方法
采用SPSS17.0统计软件进行分析。结果用―x±s表示,组间比较采用方差分析。P
4 结果
4.1 电针对大鼠学习记忆能力的影响
与正常组比较,自第2日开始,模型组大鼠平均逃避潜伏期时间显著延长(P