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蜚蠊药材质量控制论文

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1仪器与试剂

岛津UV2550紫外-可见分光光度计,梅特勒电子天平AE240(瑞士),索氏提取器,DZKW-4水浴锅(上海科析实验仪器厂),超声波清洗器(上海科导超声仪器公司),ZY紫外分析仪(上海安亭),硅胶G254(青岛海洋化工厂)。酪氨酸、亮氨酸、丙氨酸、a-氨基丙酸、甘氨酸对照品(中国药品生物制品检定所生产,批号:0856-200507,0833-200534,0832-200511,0853-200508,0815-200523),其它试剂均为分析纯。

2方法与结果

2.1对照品溶液的制备

精密称取80℃减压干燥至恒重的酪氨酸对照品10.0mg,置100ml容量瓶中,加0.02mol/L的NaOH溶液10ml,水浴加热至完全溶解,加水至刻度,摇匀,即得浓度为100.0μg/ml的酪氨酸对照品溶液(含量测定用)。

精密称取80℃干燥至恒重的亮氨酸、丙氨酸、氨基丙酸、甘氨酸各2.0mg,用50%甲醇稀释10ml,得浓度为200.0μg/ml的对照品溶液(薄层鉴别用)。

2.2供试品溶液的制备

取粉碎后的供试品10g,精密称定,置烧瓶中加95%的乙醇100ml水浴回流提取3次,1h/次,过滤,合并滤液,残渣加约30~40ml水,水浴加热,充分溶解,放冷后过滤,除去脂肪,用少量水洗涤烧瓶及漏斗两次,滤液于比色管中定容至50ml,加活性炭0.5g,振摇,过滤,滤液即为供试品溶液。

2.3药材的薄层色谱鉴别

取“2.2”项制备的供试品溶液,另取“2.1”项制备的亮氨酸、丙氨酸、氨基丙酸、甘氨酸对照品溶液,吸取上述溶液各5μl,分别点于同一以羧甲基纤维素钠为粘合剂的硅胶G薄层板上,以正丁醇∶醋酸∶水(5∶1∶1)的溶液为展开剂,展开约10~15cm,取出,晾干,用0.5%的茚三酮溶液喷雾显色,检视,供试品色谱中,在与对照品色谱相应的位置上显相同颜色的斑点。样品与对照品的薄层色谱图见图1。

2.4药材中脂肪含量的控制测定

蜚蠊药材中脂肪的含量参考国家标准标GB9695.1-1988《肉与肉制品-游离脂肪含量的测定》,使用索氏抽提法,用石油醚抽提样品中的脂肪。然后于水浴上回收溶剂,蒸干后95~105℃干燥2h称量,计算样品中脂肪含量,结果见表1。表1蜚蠊药材脂肪含量测定结果(略)

从表1可得,人工饲养的蜚蠊药材中脂肪的含量明显高于自然生长的药材,这给药厂的生产增加了处理成本,因此,有必要控制药材中脂肪的含量。根据大量的实验及药厂生产的经验,本文将蜚蠊药材中脂肪的含量控制在7.0%以内。

2.5药材中水分含量的控制取人工饲养的蜚蠊药材适量,60℃真空减压干燥至恒重,按表2取干燥后的药材,并按比例加入一定量的水,混合均匀后于250ml广口试剂瓶中密封保存,25℃恒温放置,每隔15d取样观测,以考察水分含量与药材稳定性之间的关系,实验结果见表2。表2蜚蠊药材中水分与存放时间的关系(略)

从表2可知,蜚蠊药材中水分的含量不得超过12.0%,否则药材很容易发生腐败变质,故药材中水分应控制在12%以内。

2.6药材中总氨基酸的含量测定

2.6.1测定波长的选择

取“2.1”项下配制的酪氨酸对照品溶液,加入1mlpH=5.0的柠檬酸缓冲液和1ml茚三酮显色剂,摇匀,水浴加热15min,取出,冷却至室温,加入60%乙醇3ml,摇匀,在紫外-可见分光光度计上于400~700nm范围内进行全波长扫描,酪氨酸在570nm处有最大吸收。故选择570nm为蜚蠊药材中总氨基酸含量测定波长。

2.6.2线性关系考察

精密吸取“2.1”项中制备好的酪氨酸溶液0,0.1,0.3,0.5,0.7,0.9,1.0ml于10ml容量瓶中,分别加入1mlpH=5.0的柠檬酸缓冲液和1ml0.5%的茚三酮溶液,摇匀,水浴加热15min,取出,冷却至室温,分别加入60%乙醇3ml,定容,摇匀,照分光光度法于570nm处测定吸光度A[6]。以吸收度为纵坐标,浓度为横坐标绘制标准曲线,得回归方程:A=0.067943C+0.009143,r=0.9999,结果表明酪氨酸含量在1.0~10.0μg范围之间呈良好的线性关系。

2.6.3样品中总氨基酸的测定

精密吸取供试品溶液1.0ml于10ml容量瓶中,照标准曲线制备项下的方法自“分别加入1ml柠檬酸缓冲液”起,依法测定吸收度,用标准曲线法计算出供试品溶液中氨基酸的含量(μg),并照下列公式换算为蜚蠊中总氨基酸的含量:

总氨基酸(mg/g)=(C×2.5×0.662)÷(W-W×水分含量%)

W为供试品含量(g);C为氨基酸含量(μg);2.5为样品在配制过程中的稀释倍数;转换系数0.662是氨基酸的平均分子量120除以酪氨酸的的分子量181.2所得。

2.6.4精密度实验

精密吸取同一供试品溶液,重复测定5次,总氨基酸含量的RSD为2.36%。

2.6.5稳定性实验

精密吸取同一供试品溶液,分别在放置0,1,2,3,4,5,6h后测定,总氨基酸含量的RSD为1.97%,表明供试品溶液在6h内稳定。

2.6.6重复性实验

取同一批样品,按“2.2”项下的方法制备5份供试品溶液,依法测定,蜚蠊药材中总氨基酸含量的RSD为1.64%,表明方法重复性较好。

2.6.7加样回收率实验

取已知含量的蜚蠊药材样品5份,1.0g/份,分别加入对照品酪氨酸8.0mg,依法进行样品处理和测定,计算加样回收率,结果总氨基酸的加样回收率为100.36%,RSD为1.85%,方法的回收率较好。结果见表3。表3回收率实验(略)

2.6.8样品测定

按上述供试品溶液的制备方法和测定条件,测定了5批不同产地人工饲养的蜚蠊药材中总氨基酸含量,结果见4。表4蜚蠊药材中总氨基酸的含量测定(略)

3讨论

从本研究建立的薄层色谱测定方法来看,薄层色谱展开系统分离效果好,斑点清晰,不拖尾,药材供试品与对照品色谱相应位置上显相同颜色的斑点。

由于蜚蠊药材中主要有效成分为氨基酸、蛋白质和多肽等富营养物质,水分含量过高易引起腐败变质,故药材中水分含量控制在12%以下有利于药材的保存。

含量测定方法操作简单,重复性好,可用于药品生产企业及生产基地对蜚蠊药材的质量控制

从对不同产地、不同采集时间的药材中总氨基酸含量的测定结果来看,药材中有效成分总氨基酸的含量有一定的地域性差异,同一地区的药材不同批次间也有差异,这可能与生长环境、喂养饲料及采集时间不同有关系。

【参考文献】

[1]孙星衍.神农本草经[M].上海:商务印书馆,1955:90.

[2]蒋述均,陈利铭,安一明.顺铂肝动脉灌注联合扶正抗癌治疗中、晚期原发性肝癌的临床治疗[J].福建医药杂志,1992,14(3):26.

[3]张军.虫类药的抗肿瘤实验及应用[J].中医信息,1992,9(3):39.

[4]廖剑英.康复新治疗恶性纤维组织细胞瘤1例[J].大理学院学报,2003,2(3):92.

[5]戴云,曾茗,项朋志.蜚蠊的药用价值[J].中药材,2005,28(9):848.

[6]国家药典委员会.中国药典,Ⅱ部[S].北京:化学工业出版社,2005:22.

【摘要】目的建立蜚蠊药材的质量控制方法。方法采用薄层色谱法定性鉴别,色谱条件为正丁醇-醋酸-水(5∶1∶1),0.5%茚三酮显色剂;采用索氏提取法测定脂肪含量;水分测定法检查水分的最低控制限;分光光度法测定总氨基酸的含量,茚三酮显色后检测波长为570nm。结果蜚蠊药材与对照品薄层色谱斑点清晰,易于识别,药材中脂肪的含量不得超过7.0%,水分含量不得超过12.0%,分光光度法测定总氨基酸含量,回归方程:A=0.067943C+0.009143,r=0.9999,酪氨酸含量在1.0~10.0μg范围内呈良好的线性关系。结论该方法简便易行,重复性好,可用于蜚蠊药材的质量控制。

【关键词】蜚蠊药材薄层色谱法索氏提取法水分测定法分光光度法