首页 > 范文大全 > 正文

不同人工诱导方法产生龙血竭的镇痛、抗炎效果的比较

开篇:润墨网以专业的文秘视角,为您筛选了一篇不同人工诱导方法产生龙血竭的镇痛、抗炎效果的比较范文,如需获取更多写作素材,在线客服老师一对一协助。欢迎您的阅读与分享!

[摘要] 目的 研究不同人工诱导方法产生龙血竭镇痛抗炎效果。 方法 实验资料来源于广西中医药大学制药厂实验室,收集时间为2015年12月,镇痛实验采用扭体实验方法,将80只小鼠随机分为生理盐水组,阿司匹林组(0.5 g/kg),自然产龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),生物诱导龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),化学诱导龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),每组10只,各组按0.1 ml/10 g剂量灌胃给药,1次/d,连续3 d,观察各组药物对化学刺激痛反应的影响(扭体次数、扭体潜伏期、抑制率);抗炎实验为小鼠50只,随机分为5组,每组10只,即空白对照组(给予同体积蒸馏水)、阿司匹林阳性对照组(0.2 g/kg)、自然产龙血竭组(2 g/kg)、生物诱导龙血竭组(2 g/kg)、化学诱导龙血竭组(2 g/kg),采用二甲苯致小鼠耳肿胀法,连续灌胃给药7 d,1次/d。于末次给药后1 h,在小鼠右耳涂20 μl的二甲苯致炎。1 h后处死动物,剪下双耳,用6 mm打孔器切下双耳片称重,以右耳重量减去左耳重,观察其抗炎效果(耳肿胀程度)。 结果 扭体实验:自然产龙血竭大、小剂量组,生物诱导龙血竭大、小剂量组,化学诱导龙血竭大、小剂量组,阿司匹林组的扭体次数分别为(9.01±6.87)、(10.05±7.87)、(10.51±6.37)、(11.05±7.57)、(10.39±7.35)、(10.15±7.12)、(10.00±4.57)次,与生理盐水组[(21.10±10.62)次]比较,差异有统计学意义(P0.05);生物诱导龙血竭剂量组,化学诱导龙血竭剂量组与自然产龙血竭剂量组扭体次数比较,差异无统计学意义(P>0.05)。抗炎实验:自然产龙血竭剂量组、生物诱导龙血竭剂量组、化学诱导龙血竭剂量组、阿司匹林组、空白对照组耳肿胀度分别为(7.8±2.3)、(7.3±2.6)、(7.5±2.8)、(7.0±2.2)、(11.2±2.4)mg,龙血竭给药各组、阿司匹林组耳肿胀度与空白对照组比较差异有统计学意义(P0.05)。结论 不同人工诱导产龙血竭镇痛、抗炎效果差异不明显。

[关键词] 人工诱导龙血竭;镇痛;抗炎

[中图分类号] R285.5 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721(2016)05(c)-0087-04

Comparison of analgesic and anti-Inflammatory effect of Resina Draconis generated by different artificial induction methods

LUO Yu-dong1 WU Yu-qiang1 LI Ping2 TAN An-qiang1 ZHANG Qiang1

1.Pharmaceutical Factory,Guangxi University of Traditional Chinese Medicine,Nanning 530001,China;2.Jiangan District Bureau of Commerce of Wuhan,Wuhan 430000,China

[Abstract] Objective To make an investigation on the comparison of analgesic and anti-inflammatory effects of Resina Draconis generated by different artificial induction methods. Methods The experimental data was derived from the laboratory of pharmaceutical factory of Guangxi University of TCM,which was collected in December 2015.The writhing test method was adopted in the analgesic test that recruited and divided 80 mice into 8 groups randomly and evenly with 10 mice in each group,including Saline Group,Aspirin Group (0.5 g/kg),Large-Dosage Natural Group and Small-Dosage Natural Group (naturally-produced Resina Draconis with small dosage and with large dosage,1 g/kg and 2 g/kg),Large-Dosage Biological Group and Small-Dosage Biological Group (biological-induction-produced Resina Draconis with small dosage and with large dosage,1 g/kg and 2 g/kg),Large-Dosage Chemical Group and Small-Dosage Chemical Group (chemical-induction-produced Resina Draconis with small dosage and with large dosage,1 g/kg and 2 g/kg).The drug was administered orally to mice in each group at the dose of 0.1 ml/10 g,1 time a day,for 3 consecutive days,the effect of each drug on chemically-stimulated pain reactions (the number of writhing times,writhing latency and the inhibition rate) were observed.As for the anti-inflammatory test,50 mice were recruited and divided into 5 groups randomly and evenly with 10 mice in each group,including Control Group (administered with the same volume of distilled water),Aspirin Positive Control Group (0.2 g/kg),Natural Group (naturally-produced Resina Draconis,2 g/kg),Biological Group (biological-induction-produced Resina Draconis,2 g/kg) and Chemical Group (chemical-induction-produced Resina Draconis,2 g/kg).The drugs were continuously and intragastrically administered to all the mice one time a day,for 7 days.The right ears of all the mice were coated with 20 μl xylene 1 hour after the last administration to make all the mice′s right ears swelling.All the mice were killed 1 hour later and their ears were cut off.Then,the ear flaps were cut off with a 6 mm punch and weighed to calculate the weight gaps between the right ear and the left ear and observe the anti-inflammatory effect (the swelling degree of ears). Results According to the writhing test results,the number of writhing times in Large-Dosage Natural Group and Small-Dosage Natural Group,Large-Dosage Biological Group and Small-Dosage Biological Group,Large-Dosage Chemical Group and Small-Dosage Chemical Group as well as Aspirin Group were (9.01±6.87),(10.05±7.87),(10.51±6.37),(11.05±7.57),(10.39±7.35),(10.15±7.12),(10.00±4.57) times versus Saline Group′s of (21.10±10.62) times,which showed obvious inhibitory effects on the number of writhing times (P0.05).No significant difference was seen between the writhing frequency of Large-Dosage Natural Group,Small-Dosage Natural Group,Large-Dosage Biological Group,Small-Dosage Biological Group,Large-Dosage Chemical Group and Small-Dosage Chemical Group (P>0.05).As for the anti-inflammatory experiment,the swelling degree of ears in Natural Group,Biological Group,Chemical Group,Aspirin Positive Control Group and Control Group were (7.8±2.3),(7.3±2.6),(7.5±2.8),(7.0±2.2),(11.2±2.4) mg respectively,with the existence of significant difference between Control Group and the other four groups (P0.05). Conclusion Resina Draconis generated by different artificial induction methods proves itself with no significant difference in anti-inflammatory and analgesic effects.

[Key words] Artificial-induction-produced resina draconis;Analgesia;Anti-inflammatory

龙血竭为百合科植物剑叶龙血树[Dracaena co-chinchinensis(Lour.)S.H.Chen]含脂木质部经提取加工制成的树脂,具有活血散瘀、消炎止痛、收敛止血、生肌敛疮、补血益气等功效[1-4]。剑叶龙血树在自然环境下生长产生的龙血竭树脂产量少,生产周期长,且剑叶龙血树药材由于过度采伐而日益匮乏。目前国内已开展了采用人工诱导(生物诱导、化学诱导)方法产生龙血竭的相关研究[5-8],但人工诱导方法产生的龙血竭是否能够替代自然产龙血竭,仍需在活性成分、药理药效、毒理、临床效果等方面开展一致性评价研究。本文研究不同人工诱导产龙血竭镇痛、抗炎作用,以期为人工诱导龙血竭的合理开发和利用提供依据。

1 材料与方法

1.1 动物

昆明系小鼠,体重18~22 g,雌雄各半,清洁级,合格证号:SCXK桂2014-0002,购自广西医科大学实验动物中心。饲养于相对湿度为(60±10)%,温度为20~25℃的环境中,自由饮水,颗粒饲料喂养。

1.2 试药

生物诱导龙血竭的制备,按文献方法[5-6]将9568D镰孢霉接种于剑叶龙血树材质后,将诱导生成的红色树脂药材用95%乙醇回流提取,得生物诱导龙血竭(批号:20150801);化学诱导龙血竭的制备,按文献方法[7-8]选择10%的草酸作为化学诱导剂,将诱导剂注入龙血树枝干中,诱导生成的红色树脂药材用95%乙醇回流提取,得化学诱导龙血竭(批号:20150701);自然产龙血竭(芒果牌,批号:20141101)。以上产品均由广西中医药大学制药厂提供,实验前用50%二甲基亚砜将各试药分别配制成所需的浓度;阿司匹林肠溶片,北京曙光药业有限责任公司,生产批号:20140607,粉碎后以注射用水加吐温-80助溶配制成混悬液,备用。

1.3主要仪器

BS224S型电子天平(北京赛多利斯);RE501旋转蒸发仪(巩义市予华仪器有限公司),HH-6数显恒温水浴锅(常州澳华仪器有限公司),101-1恒温电热鼓风干燥箱(天津市泰斯特仪器有限公司)。

1.4 小鼠扭体镇痛实验

取昆明种小鼠80只,体质量18~22 g,雌雄各半,随机分为生理盐水组,阿司匹林(50 mg/ml),自然产龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),生物诱导龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),化学诱导龙血竭小、大剂量组(1 g/kg和2 g/kg),每组10只,各组按0.1 ml/10 g剂量灌胃给药,1次/d,连续3 d。末次给药1 h后,各鼠分别腹腔注射0.6%醋酸溶液0.2 ml/10 g(醋酸溶液临用前配制),观察并记录注射醋酸溶液后15 min内各组发生扭体反应(腹部收缩内凹、伸展后肢、臀部抬高、蠕行)的鼠数和各鼠扭体次数[9-10]。扭体反应抑制百分率(%)=(对照组平均扭体数-给药组平均扭体数)/对照组平均扭体数×100%。

1.5 小鼠抗炎作用实验

采用小鼠二甲苯所致耳肿胀实验。取体质量为18~22 g小鼠50只,随机分为5组,每组10只,即空白对照组(给予同体积蒸馏水)、阿司匹林阳性对照组(0.2 g/kg)、自然产龙血竭组(2 g/kg)、生物诱导龙血竭组(2 g/kg)、化学诱导龙血竭组(2 g/kg),连续灌胃给药7 d,1次/d。于末次给药后1 h,在小鼠右耳涂20 μl二甲苯致炎。1 h后处死动物,剪下双耳,用6 mm打孔器切下双耳片称重,以右耳重减去左耳重,观察其肿胀程度[9-10]。

1.6统计学方法

采用统计软件SPSS 18.0对实验数据进行分析,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用方差分析,以P

2结果

2.1各组小鼠扭体镇痛实验的比较

自然产龙血竭大、小剂量组,生物诱导龙血竭大、小剂量组,化学诱导龙血竭大、小剂量组与生理盐水组比较,能明显抑制小鼠的扭体次数(P0.05);生物诱导龙血竭剂量组、化学诱导龙血竭剂量组与自然产龙血竭剂量组扭体镇痛作用比较,差异无统计学意义(P>0.05)(表1)。

表1 不同人工诱导产龙血竭对小鼠醋酸扭体反应的影响(x±s,n=10)

与生理盐水组比较,**P

2.2 不同人工诱导产龙血竭对小鼠耳肿胀的影响

自然产龙血竭剂量组(2 g/kg)、生物诱导龙血竭剂量组(2 g/kg)、化学诱导龙血竭剂量组(2 g/kg)和阿司匹林组能明显抑制小鼠耳肿胀(P0.05)(表2)。

表2 不同人工诱导产龙血竭对小鼠耳肿胀的影响(x±s,n=10)

与空白对照组比较,*P

3讨论

龙血竭属于树脂类药材,是贵重中药进口血竭的国产替代品,剑叶龙血树为龙血竭的来源植物,收载于《广西壮族自治区壮药质量标准》,壮药名为榧勒垄,具有定痛止血、敛疮生肌、活血散瘀等功效,用于瘀血作痛、跌打损伤、外伤出血、妇女气血凝滞和脓疮久不收口等。剑叶龙血树多分布于石灰岩地区,生长缓慢,自然环境下剑叶龙血树需生长十几年,甚至几十年才可能用来生产血竭,自然产脂率低,群体扩增能力差。随着市场对龙血竭需求的增长,剑叶龙血树资源严重不足。龙血竭在剑叶龙血树中的形成机制尚不清楚,国内大多学者认为龙血竭是剑叶龙血树树干受到损伤后在微生物的侵染和(或)自然氧化作用下逐渐形成的,通过实验研究认为虫蛀、镰刀菌与树脂形成有相关性。目前国内已开展了采用人工诱导(生物诱导、化学诱导)方法产生龙血竭的相关研究,但人工诱导的龙血竭能否作为自然生长龙血竭的替代品,还需作进一步的系统考察[12-21]。

本文研究不同人工诱导产龙血竭镇痛、抗炎作用,镇痛实验结果表明,自然产龙血竭、生物诱导龙血竭、化学诱导龙血竭能明显抑制小鼠的扭体次数,其镇痛作用与阿司匹林相似;生物诱导龙血竭,化学诱导龙血竭与自然产龙血竭比较,镇痛作用差异无统计学意义。抗炎实验表明,自然产龙血竭、生物诱导龙血竭、化学诱导龙血竭和阿司匹林均能明显抑制小鼠耳肿胀,具有较好的抗炎作用;生物诱导龙血竭、化学诱导龙血竭与自然产龙血竭比较,抗炎作用差异无统计学意义。不同人工诱导产龙血竭镇痛、抗炎作用效果的比较研究,为人工诱导产龙血竭在临床方面的广泛应用提供了理论依据。

[参考文献]

[1] 蔡希陶,许再富.国产血竭植物资源的研究[J].云南植物研究,1979,1(2):1-9.

[2] 徐曾涛.龙血竭化学成分的研究现状[J].北方药学,2015, 12(1):105-106.

[3] 高源,普德兵,李蓉涛,等.龙血竭形成过程中甾体皂苷成分的变化[J].云南中医中药杂志,2014,35(6):75-77.

[4] 曹广军,张静泽,胡迎庆,等.不同工艺提取龙血竭的抗炎镇痛止血作用的比较[J].天津药学,2005,17(3):3-4.

[5] 江东福,马萍,杨靖,等.9568D镰孢霉作用于死态龙血树形成血脂的研究[J].应用生态学报,2003,14(3):477-478.

[6] 杨靖,江东福,马萍.特异性真菌作用于龙血树材质形成血竭的研究[J].中草药,2003,35(5):572-574.

[7] 王云.剑叶龙血树叶源血竭的诱导研究[D].昆明:云南大学,2010.

[8] 郑水.血竭诱导机制及几种龙血树分子分类的初步研究[D].昆明:云南大学,2013.

[9] 陈奇.中药药理研究方法学[M].2版.北京:人民卫生出版社,2006:244.

[10] 农毅清,蒋林,吴玉强,等.常春卫矛与爬行卫矛的镇痛抗炎作用及急性毒性研究[J].时珍国医国药,2012,23(6):1384-1385.

[11] 周智,韦奇志,吴植强,等.扶芳藤一般药理及急性毒性研究[J].中国药师,2011,14(8):1115-1117.

[12] 苏秀芳,梁振益.珍稀濒危植物剑叶龙血树茎挥发油的化学成分测定[J].广东农业科学,2010,11(1):177-181.

[13] 樊兰兰,屠鹏飞,何鉴星,等.中药龙血竭原植物剑叶龙血树的形态组织学研究及所含树脂的分布和成分检测[J].中国中药杂志,2008,33(10):1112-1116.

[14] 陈定芳,宋启示.剑叶龙血树根、茎、叶中血竭成分分析[J].中草药,2005,36(10):1545-1547.

[15] 李云,萧伟,秦建平,等.HPLC同时测定龙血竭及其提取物中5个有效成分的含量[J].中国中药杂志,2012, 37(4):929-933.

[16] 周艳林,闵建国,邹准,等.HPLC-DPPH评价剑叶龙血树中抗氧化活性成分及构效关系[J].中草药,2015,46(12):1797-1799.

[17] 广西壮族自治区食品药品管理局.广西壮族自治区壮药质量标准[M].南宁:广西科学技术出版社,2008.

[18] 闵建国,周艳林,邹准,等.HPLC法测定壮药剑叶龙血树中7-羟基-4′-甲氧基黄烷和紫檀[J].中草药,2013, 44(17):2471-2473.

[19] 滕建北,朱华,蔡毅,等.剑叶龙血树的过氧化物酶活性与树脂产生关系初探[J].中国民族民间医药,2008,7(1):20-22.

[20] 王芳芳,胡琳,李正涛,等.剑叶龙血树树叶化学成分及其改善HepG-2细胞胰岛素抵抗的作用[J].云南民族大学学报(自然科学版),2015,24(5):349-353.

[21] 李成,宋启示.剑叶龙血树叶化学成分研究[J].中草药,2008,39(10):1456-1457.

(收稿日期:2016-04-21 本文编辑:卫 轲)