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参莲提取物对M1巨噬细胞的影响

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[摘要] 该实验探讨参莲提取物对动脉粥样硬化发展中的m1巨噬细胞影响。MTT法检测参莲提取物对RAW264.7细胞的毒性作用;γ干扰素(IFN-γ)及脂多糖(LPS)诱导RAW264.7细胞成M1型巨噬细胞,然后加入高、中、低剂量的参莲提取物(50,25,12.5 mg・L-1)作用,流式细胞术检测M1巨噬细胞膜分子CD86的表达,RT-PCR法检测M1巨噬细胞中iNOS和TNF-α mRNA的水平,ELISA法检测M1巨噬细胞上清中IL-6和TNF-α的含量。结果发现IFN-γ及LPS能诱导RAW264.7细胞极化为M1型巨噬细胞,M1巨噬细胞膜分子CD86的表达、细胞中iNOS和TNF-α mRNA的表达以及细胞分泌的IL-6和TNF-α的含量均有显著性地提高;参莲提取物各剂量均可抑制M1型巨噬细胞膜分子CD86、细胞中iNOS及TNF-α mRNA的表达,降低细胞分泌炎症细胞因子IL-6及TNF-α的含量。通过以上研究表明IFN-γ及LPS能诱导RAW264.7细胞极化为M1型巨噬细胞;参莲提取物对M1型巨噬细胞有一定的抑制作用。

[关键词] 参莲提取物; M1巨噬细胞;细胞因子;动脉粥样硬化

[收稿日期] 2014-03-19

[基金项目] 国家“重大新药创制”科技重大专项(2009ZX09301-005-2-4);科技部科研院所技术开发研究专项(NCSTE-2007-JKZX-301)

[通信作者] 朱晓新,博士,研究员,从事中药药理学及药代动力学研究,Tel:(010)64015008,E-mail:

[作者简介] 周冰冰,硕士研究生,Tel:(010)64015008,E-mail:

巨噬细胞是第一个被认为与动脉粥样硬化(atherosclerosis,As)相关的炎症细胞,随着研究的不断深入,单核-巨噬细胞的可塑性和异质性成为研究者关注的焦点。巨噬细胞在体内外不同的局部微环境影响下,可分化为M1,M2型巨噬细胞[1-2]。M1型巨噬细胞又被称为经典激活的巨噬细胞(classically activated macrophage),诱导后能分泌大量的炎性细胞因子,参与抗原递呈,加速As的发展;M2型巨噬细胞被称为替代激活的巨噬细胞(alternatively activated macrophage),诱导后能高表达炎症抑制因子,抑制炎症反应,促进组织损伤修复[2-3]。M1和M2巨噬细胞在体内相互转化,其平衡影响着As的发展和转归[4-5]。

参莲(SL)提取物是以活血化瘀、清热解毒为法组方,用现代工艺制备而成的中药复方提取物。参莲提取物主要含丹参酮类、丹酚酸类及穿心莲内酯类等成分。动物研究结果表明,参莲提取物可明显局限As斑块面积,减轻病变程度;并可通过抑制炎性介质的产生和释放,减少黏附分子、趋化因子和生长因子的异常表达,阻断As炎症反应;同时细胞实验发现,参莲提取物对TNF-α诱导的THP-1单核细胞迁移、摄脂和分泌等环节均有不同程度的影响,对As疾病具有良好的预防和治疗作用[6-8]。本实验拟通过在体外诱导RAW264.7细胞成M1型巨噬细胞,并进一步观察参莲提取物对M1型巨噬细胞的影响,以期解释参莲提取物对As防治作用。

1 材料

1.1 试剂 RAW264.7细胞(北京大学医学部医学实验中心提供,ATCC公司);参莲提取物由中国中医科学院中药研究所化学室提供(配比为丹参水溶性部分4.13%,脂溶性部分2.5%,穿心莲脂溶性部分2.82%);DMEM培养基(Gibco公司,批号8113292);胎牛血清(Hycione公司,批号AVF73692);小鼠重组IFN-γ(Peprotech公司,批号101227);LPS(Sigma公司,批号L2880);Taq DNA多聚酶、dNTP等PCR试剂盒(Thermo公司,批号00129776);TRIzol(Ambion公司,批号66206);DEPC水(Soiarbio公司,批号20130805);小鼠IL-6 ELISA检测试剂盒(联科生物公司,批号282307431);小鼠TNF-α ELISA检测试剂盒(联科生物公司,批号220630942);FITC标记的大鼠抗小鼠CD86抗体(Biolegend公司,批号105005)。

1.2 仪器 ELX800 Spectramax190 连续波长酶标仪(美国MDC 公司);FACSCalibur流式细胞仪(BD公司);AC85V-265V PCR仪(Coyote Bio公司);DYY-6D电泳仪(北京市六一仪器厂);Champgel 5500凝胶成像仪(Sagecreation公司)。

1.3 引物 本实验所用引物见表1,由北京三博远志生物技术有限责任公司合成。

2 方法

2.1 RAW264.7的培养与传代 RAW264.7细胞复苏后,以含10%胎牛血清的DMEM培养基,5%CO2,37 ℃恒温培养箱培养细胞,每隔24 h观察细胞状态并换液和传代,待细胞融合80%左右时进行传代,必要时以1∶2或1∶3传代,以维持细胞的良好生长状态。

2.2 MTT法检测参莲提取物对RAW264.7细胞的毒性作用 将生长状态良好的RAW264.7细胞以1×104细胞/100 μL/孔接种于96孔板中,待细胞完全贴壁且生长状态良好时加入不同剂量参莲提取物作用24 h,设置剂量分别为800,400,200,100,50,25,12.5,6.25 mg・L-1及空白对照组。药物作用完毕后,每孔加入10%的MTT 20 μL(5 g・L-1,即0.5%MTT),继续培养4 h后取出培养板,1 000 r・min-1离心10 min,小心吸去孔内培养液。每孔加入150 μL二甲基亚砜,置摇床上低速震荡10 min,使结晶物充分溶解。490 nm处检测各孔的吸光度(A)。同时设置空白孔(培养基、MTT、二甲基亚砜)。按公式计算细胞生长抑制率=(1-A实验/A对照)×100%。

2.3 M1型巨噬细胞的诱导刺激及参莲提取物的作用 干预前 12 h 以 1×105个/mL密度铺细胞于6孔板,以2 mL完全培养基培养。待细胞完全贴壁且生长状态良好时加入2.5 μg・L-1IFN-γ和200 μg・L-1 LPS共同刺激培养12 h,诱导M1型巨噬细胞的形成[9-10]。诱导后加入不同浓度的参莲提取物作用12 h,药物浓度根据IC50进行设置。

2.4 流式细胞术检测M1型巨噬细胞细胞膜CD86蛋白表达 诱导、药物作用后以细胞刮将细胞刮除,1×106个/管,PBS洗1次,100 μL PBS重悬,加入1 μL的FITC标记的大鼠抗小鼠CD86抗体,4 ℃避光共孵育30 min,PBS洗去游离的抗体,用300 μL PBS重悬后,流式细胞仪检测细胞表面CD86的表达。

2.5 总RNA的提取及RT-PCR 提取方法参照试剂盒说明书进行,向刺激12 h及后药物作用12 h的细胞中加入预冷的PBS清洗2遍,将6孔板中的PBS去除干净,加入800 μL的TRIzol,静置放置5 min后用吹打管吹打5次,移入1.5 mL离心管中,然后加入200 μL氯仿,混匀,室温静置10 min后13 000×g高速低温离心10 min,小心将上层水相移至不含RNA酶的1.5 mL离心管中加入500 μL异丙醇,振荡混匀。静置5 min,以11 766 r・min-1(13 000×g)高速低温离心10 min,小心移去上清,再往离心管中加入75%乙醇1 mL,震荡后以11 766 r・min-1高速低温离心5 min,重复2次。小心弃去上清,室温静置5~10 min使RNA沉淀恰好干燥,加水溶解。按照PCR试剂盒说明书,以逆转录进行cDNA第一链合成:将5.5 μL的水和RNA(1 μg)放入100 μL EP管内,置于冰上,使RNA终浓度为0.5 g・L-1,再加入Oligo(dt) 0.5 μL,轻轻混合均匀,短时间离心;将反应液置于65 ℃ 5 min,冰上1 min,短时间离心;按顺序加入:5×buffer 2 μL,RNasin 0.5 μL,DNTP 1 μL,逆转录酶 0.5 μL,轻轻混合均匀,短时间离心,将混合物置于42 ℃,60 min;70 ℃加热5 min,中止上述反应,置于冰上。然后以cDNA为模板扩增iNOS和TNF-α的基因编码片段,以鼠GAPDH为内参照,扩增条件如下: 94 ℃预变性5 min;94 ℃变性45 s,Tm退火45 s,72 ℃延伸45 s,30个循环;72 ℃延伸7 min。

2.6 ELISA检测参莲提取物对M1型巨噬细胞细胞因子分泌的影响 按照以上诱导方法,分别收集刺激后和药物作用后细胞培养上清。按照试剂盒说明操作(此试剂盒为预包被试剂盒),洗板2次后加入洗液浸泡15 min,将板内洗液扣除干净,加入培养上清50 μL,加入1∶50稀释的生物素标记检测抗体100 μL,室温孵育2 h后洗板6次,加入1∶100亲和素标记辣根过氧化物酶100 μL,室温孵育45 min后洗板6次,加入显色液100 μL,室温避光15 min左右加入50 μL终止液终止,10 min内于450 nm波长检测吸光度(A)。

2.7 统计学分析 采用GraphPad Prism 5.0软件和SPSS 17.0软件对数据进行统计分析,结果以±s表示,2组间差异比较采用t检验,多组间差异比较采用单因素方差分析,P

3 结果

3.1 诱导后RAW264.7细胞形态改变 诱导剂诱导RAW264.7细胞12 h及药物作用12 h后,倒置显微镜(10×40倍镜)下观察到细胞生长状态,正常组的细胞是半悬浮的圆形状态;12 h模型组的细胞明显诱导贴壁,形态发生很大改变,长出触脚,变成梭形或纺锤形,单个细胞均比正常组细胞变大;各给药组细胞均趋于正常,有部分细胞恢复为半贴壁的圆形细胞,见图1。

3.2 MTT法检测参莲提取物的细胞抑制作用 为得到参莲提取物对RAW264.7细胞合理的用药浓度,设置了8个不同浓度的参莲提取物组,分别为800,400,200,100,50,25,12.5,6.25 mg・L-1,孵育24 h。随着参莲提取物浓度的降低,对RAW264.7细胞的抑制作用降低,其抑制率逐渐降低。浓度过高药物的溶解度较差,对结果有一定的影响。求得的IC50为100 mg・L-1,最终设定药浓度为IC50的1/2倍为高剂量50 mg・L-1,中剂量为25 mg・L-1,低剂量为12.5 mg・L-1,见图2。

3.3 参莲提取物对M1型巨噬细胞表面分子CD86的影响 IFN-γ和LPS刺激RAW264.7细胞后,细胞膜表达CD86的细胞比率明显增加(P

3.4 参莲提取物对M1型巨噬细胞分子中iNOS及TNF-α mRNA表达的影响 与空白组比较,IFN-γ和LPS诱导12,24 h,RAW264.7细胞的iNOS,TNF-α mRNA表达均明显增加(P

3.5 参莲提取物对M1型巨噬细胞培养上清中IL-6和TNF-α含量的影响 IFN-γ和LPS刺激RAW264.7细胞后均明显增加细胞培养上清中IL-6和TNF-α的含量(P

4 讨论

早期,As被认为是动脉血管壁内脂类和基质纤维素的积累[11],随着研究的不断深入,认为As属于一种慢性血管炎症性疾病,且炎症还是导致斑块破裂事件的基础[12-13],而巨噬细胞与炎症反应密切相关。近年来,进一步的研究认为巨噬细胞的表型具有异质性和可塑性,而具有功能性的巨噬细胞可诱导极化为M1型巨噬细胞和M2型巨噬细胞[1-2]。本课题组前期研究结果表明,参莲提取物防治As效果卓著,可明显局限As斑块面积,减轻病变程度;并可通过抑制炎性介质的产生和释放,减少黏附分子和趋化因子的异常表达,阻断As炎症反应[14-15]。为进一步解释参莲提取物对As防治作用,本实验旨探讨参莲提取物对M1型巨噬细胞极化的影响。

本实验参考陈涛等[9]和Khallou-Laschet J等[10]的方法,均采用IFN-γ及LPS联合干预RAW264.7细胞,使诱导成M1巨噬细胞,此方法为较为公认的模型方法。M1巨噬细胞相关的表型指标较多,但较为明确的标志性指标较少。研究发现,在动脉粥样斑块初期有大量的CD86的阳性表达,其含量的高低与As的严重程度成正相关[16]。另有研究通过虫草素和阿糖腺苷对人工诱导的巨噬细胞表型的影响,发现虫草素和阿糖腺苷均能降低M1巨噬细胞CD86的表达[17]。因此,本实验将CD86作为分子标记物用于M1巨噬细胞的检测。

已有大量研究表明,M1型巨噬细胞可分泌IL-6,TNF-α,IL-12及IL-1β等炎性细胞因子。这些炎性因子能参与抗原递呈,表达iNOS 和活性氧(ROS),促进NO 等活性氧合成,进而参与炎症反应及病菌清除,促进As的发展[18] 。本实验通过观察参莲提取物对M1型巨噬细胞分泌的细胞因子IL-6和TNF-α的含量,以及iNOS及TNF-α mRNA的表达,探讨参莲提取物对M1型巨噬细胞极化的影响。

实验结果发现,IFN-γ及LPS干预RAW264.7细胞,能成功的使RAW264.7细胞在生长状态良好的情况下极化为M1型巨噬细胞,M1巨噬细胞模型中的细胞膜分子CD86、细胞分泌的细胞因子IL-6和TNF-α以及细胞中iNOS和TNF-α的含量均显著性的增加。不同浓度的参莲提取物均能明显降低M1巨噬细胞膜分子CD86的表达,同时降低M1巨噬细胞中iNOS及TNF-α mRNA的表达,并能降低M1巨噬细胞分泌的炎症细胞因子IL-6及TNF-α的含量。在造模的同时用药物进行干预,结果发现,不同浓度的参莲提取物同样能明显降低M1巨噬细胞分泌的炎症细胞因子的含量。综上所述,提示参莲提取物能降低M1巨噬细胞的表达,这对抑制炎症发展,以及As的进一步恶化有积极作用。

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