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乳化PCR扩增技术检测土壤中的典型病原菌

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[摘 要]研究可以提高PCR扩增效率,改善多重PCR多引物检测易产生引物二聚体等的不足,乳化pcr扩增技术检测土样中有代表性的病原菌的反应参数和条件进行研究,改善多重PCR扩增检测易生成引物二聚体等方面的不足,提高PCR扩增效率。

[关键词]gyrB基因 PCR扩增 土壤 典型病原菌

中图分类号:TH113.22 文献标识码:A 文章编号:1009-914X(2016)23-0082-01

引言

近年来较多研究报道[1]均指出乳化PCR扩增技术可以弥补多重PCR技术的不足,特别是易生成引物二聚体这一不足。利用乳化PCR扩增技术的这一优势,将其与基因芯片的检测技术联用,应用于Y染色体的检测[2]。

1 材料与方法

1.1 土壤样品的采集及预处理

研磨过筛(20目筛),-80°C保存备用。

1.2 供试病原菌菌株

大肠杆菌:ATCC 25922;沙门氏菌:副伤寒沙门氏菌50073、肠炎沙门氏菌、鼠伤寒沙门氏菌ATCC50071;金黄色葡萄球菌:A号ATCC、MHATCC 25923;福氏志贺菌51302。

1.3 主要试剂及试剂盒

主要试剂及试剂盒:span80,tween80,tritonX-100,mineral oil,无水乙醚,Taq DNA聚合酶、dNTP、引物、50bp DNA Ladder、100 bp DNA Ladder(上海生工生物工程技术服务有限公司),琼脂糖(中国惠兴生化试剂有限公司),FastDNA? SPIN Kit for Soil 试剂盒(MP Biomedicals,Solon,OH,USA)。

1.4 主要仪器

主要仪器:PTC-100 PCR仪(MJ Research,Waltham,MA,USA),高速离心机(上海安亭科学仪器厂),DYY-8B型电泳仪(北京市六一仪器厂),凝胶成像系统(Bio-Rad Laboratories,Segrate,Italy),FastPrepTM FP120核酸提取仪(Bio 101,Carlsbad,CA,USA),Mini-BeadBeater-16TM核酸提取仪(Biospec products,USA)。

1.5 病原菌污染的土壤DNA提取

利用FastDNA? SPIN Kit for Soil 试剂盒与Mini-BeadBeater-16TM核酸提取仪提取土壤DNA。主要过程参见FastDNA? SPIN Kit for Soil 试剂盒。

1.6 引物合成

根据致病菌的功能基因phoA、ttrBCA、vicK、virA,合成4对特异性引物(5'to3'):致病性大肠杆菌序列phoA正向TACAGGTGACTGCGGGCTTATC、phoA反向CTTACCGGGCAATACACTCACTA,622bp;金黄色葡萄球菌vicK1CTAATACTGAAAGTGAGAAACGTA、vicK2TCCTGCACAATCGTACTAAA,289bp;志贺氏菌virA-FCTGCATTCTGG

CAATCTCTTCACA、virA-RTGATGAGCTAACTTCGTAAGCCCTCC,215bp;沙门氏菌ttrC-13ACT GCC GAT AAATGC ACG TT、ttrB-1CTT TTT TCCGCC

AGT GAA GA,418bp。

1.7 产物电泳检测

电泳检测条件:5μl破乳后的PCR扩增产物混合l 6×上样缓冲液1μ,打入琼脂糖凝胶(2%(w/v))的加样孔中,0.5×TBE缓冲液,200V恒压,电泳时间25-35 min,紫外凝胶成像系统观察结果并进行分析。

2 结果与分析

2.1 优化乳化PCR扩增条件

破乳时改变条件如下:加入40μlNX Buffer,孵化2min(室温),涡旋振荡20秒,12000转离心5min;加入体积比为1:1的乙醚与超纯水混合溶液(现用现配,混合时间为30s),8000转离心2min,去掉油相。电泳结果(图1):1-8泳道的产物条带是乳化PCR扩增方法,9泳道产物条带是用的常规多重PCR 扩增法,可以看出常规多重PCR扩增产物条带比乳化PCR的要更明亮和清晰,但乳化PCR扩增没有弥散现象,而多重PCR扩增有。

2.2 乳化PCR扩增应用

土壤样品:志贺氏菌和沙门氏菌污染的土壤样品。用乳化PCR扩增检测结果见图2:1-4(乳化PCR)泳道和6-7(多重PCR)泳道均在215bp、418bp处有志贺氏菌、沙门氏菌的目的产物条带。泳道6-7多重PCR扩增产物条带相对更明亮清晰。但随着引物数量的增多,乳化PCR扩增技术的优势越发明显,能有效的弥补多重PCR扩增极其容易产生非特异性扩增、引物二聚体等不足。

3 结论

乳化PCR扩增检测土壤中典型病原菌的反应条件经优化后为:100μl油相,0.1%tween80,0.05%tritonX-100,mineral oil;水相,4μlMg2+2.5mM10×PCR Buffer, 0.25mM dNTP2.5μl,上下游引物各0.5μl,DNA模板1μl,5U taq DNA聚合酶,1.25μl的5%(v/v)DMSO,14.75μl的5μg/μl BSA。将以上水相一滴滴加入100μl的油相中,涡旋振荡(20s),分装至4个PCR管中,放入PCR扩增仪。反应参数为95℃,2min(94℃,10s;50℃,10s;72℃,15s)40cycles;72℃,15s。

破乳方法:向扩增产物中加入NX Buffer40μl,室温孵化2min,涡旋振荡20s,12000rpm离心5min;加入体积比为1:1的无水乙醚与超纯水混合溶液(现用现配),混合30S,8000rpm离心2min,去除残留油相。

有报道在乳化过程中加入磁力搅拌器,可以提高乳化效率,可以应用在未来的研究中[2]。

参考文献

[1]Ge Q Y, Bai Y F, Liu Z B, et al. Detection of fetal DNA in maternal plasma by microarray coupled with emulsions PCR. Clinica Chimica Acta, 2006:82-88.

[2]Ge Q Y, Liu Z B, Bai Y F, et al. Emulsion PCR-based method to detect Y chromosome microdeletions. Analytical Biochemistry, 2007:173-178.

[3]Nakano M, Komatsu J, Matsuura S, et al. Single-molecule PCR using water-in-oil emulsion. Journal of Biotechnology, 2003:117-124.

作者简介:

刘燕,江苏苏州,1986.01, 硕士研究生,研究方向环境微生物、环境检测、环境工程、环境影响评价等