开篇:润墨网以专业的文秘视角,为您筛选了一篇地黄多糖对过氧化氢损伤大鼠脂肪间充质干细胞的保护作用范文,如需获取更多写作素材,在线客服老师一对一协助。欢迎您的阅读与分享!
摘要:目的:研究地黄多糖对过氧化氢损伤大鼠脂肪间充质干细胞(ADMSCs)的保护作用,为ADMSCs的应用提供实验依据。方法:分离、培养并鉴定大鼠脂肪间充质干细胞。取第3代ADMSCs,随机分为7组,A:H2O2损伤组;B、C、D、E、F分别为H2O2损伤加地黄多糖各浓度作用组(1mg/L、10mg/L、50mg/L、100mg/L、200mg/L);G:正常对照组,对应于分组,加入不同浓度地黄多糖培养24h,加250μmol/L过氧化氢(H2O2)作用2h,诱导ADMSCs损伤,然后用MTT法检测细胞存活情况,比色法检测细胞培养上清中乳酸脱氢酶(LDH)的水平。结果:A组与G组相比较存活细胞显著减少(P
关键词:地黄多糖;间充质干细胞;脂肪;过氧化氢;乳酸脱氢酶
中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1673-7717(2008)04-0755-03
脂肪间充质干细胞(ADMSCs)即脂肪来源的间充质干细胞,是成体干细胞的一种。研究[1]表明ADMSCs具有很强的增殖分化能力,不仅可以自我更新,而且能够向骨、软骨、脂肪、神经、肌肉、内皮等方向分化,所以继骨髓间充质干细胞后,脂肪间充质干细胞成为干细胞移植治疗领域的又一研究热点。地黄多糖是中药地黄的主要有效成分,具有抗衰老、抗炎、保护心、脑、肾脏和胃黏膜等多种生物学作用[2-3]。本实验旨在将祖国的传统中药地黄多糖与ADMSCs研究结合起来,观察地黄多糖对过氧化氢(H2O2)损伤ADMSCs的影响,为ADMSCs的应用提供实验依据。
1 实验材料
DMEM培养基(Gibco);胎牛血清(Gibco) ;Ⅰ型胶原酶(Sigma);MTT(Sigma);DMSO(Sigma);胰蛋蛋白酶(粉剂,Amresco公司);PBS平衡盐液(自配);兔抗大鼠CD13、CD31、CD44、CD45、CD105等多克隆抗体、SABC免疫组化试剂盒及DAB显色试剂盒(武汉博士德生物有限公司);地黄多糖(军事医学科学院毒物药物研究所);过氧化氢(总医院试剂室配置)。
2方法
2.1ADMSCs的分离 培养和鉴定取体重约200g的Wistar雄性大鼠,戊巴比妥腹腔注射麻醉,无菌条件下开腹,切取双侧附睾处脂肪,PBS清洗3次,剪碎,移入小三角烧瓶,加入0.08%胰酶消化10min后,再加入0.1%Ⅰ型胶原酶(用含10%胎牛血清的DMEM配置)继续消化40min,吸取消化液离心(1500r/min,5min),弃上清,加入约5mL PBS重悬、洗涤细胞,再次离心(同上),弃上清,用含10%胎牛血清的DMEM培养基重悬细胞,接种,置入37℃,5% CO2培养箱(Heracus公司)中孵育,24h后首次换液。之后每3天换液,待细胞铺满培养瓶底约80%时传代,继续培养。对第3代细胞行免疫组织化学染色,鉴定其表面分子CD13、CD31、CD44、CD45、CD105等的表达。
2.2地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs细胞存活情况的影响取第3代ADMSCs接种于96孔板(5×103个细胞/孔),37℃,5%CO2条件下培养24h贴壁,随机分为7组,A:H2O2损伤组;B、C、D、E、F分别为H2O2损伤加地黄多糖各浓度作用组(1mg/L、10mg/L、50mg/L、100mg/L、200mg/L);G:正常对照组。对应于分组,加入不同浓度地黄多糖继续培养24h后;加250μmol/L H2O2作用2h,然后用MTT法检测各组细胞存活情况,酶联免疫测定仪测定波长492nm处的吸光度,用吸光度值(OD值)来反应各组存活细胞的多少和细胞活性。
2.3地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs乳酸脱氢酶(LDH)水平的影响取第3代ADMSCs接种于24孔板(2×104个细胞/孔),37℃,5%CO2条件下培养24h贴壁,分组同上,对应于分组,加入不同浓度地黄多糖继续培养24h后;加250μmol/L H2O2作用2h,取细胞培养上清,比色法检测各组LDH的水平。
2.4统计处理数据以均数±标准差表示,SPSS10.0软件进行分析,组间差异用方差分析,P
3结果
3.1ADMSCs的培养 鉴定从脂肪组织中可以分离获得大量长梭形细胞,具有很强的增殖能力。原代细胞培养7天左右即可铺满培养瓶底70%~80%。传代后细胞仍保持旺盛的增殖能力,每3天即可铺满培养瓶底70%~80%;形态逐渐一致,细胞生长分布呈螺旋形或者旋涡形(见图1)。免疫组化染色CD13、CD44、CD105阳性;而CD31、CD45阴性(见图2~图4)。
3.2地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs细胞存活情况的影响结果见表1。250μmol/LH2O2作用ADMSCs2h后,可以引起OD值减小,与正常组比较有显著差异(P
3.3地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs乳酸脱氢酶(LDH)水平的影响结果见图5。250μmol/L H2O2作用ADMSCs2h后,可以引起细胞培养上清中LDH水平的升高[(113.083±2.807)U/L],与正常组[(85.800±0.424)U/L]比较差异有统计学意义(P
4讨论
近年来随着我国人民生活水平不断提高,心脑血管疾病、糖尿病等的发病率也不断升高,逐渐成为危害人们生命和健康的主要疾病。广大医务工作者在不断地探索更加有效的治疗方法,在开发新的药物和辅助器械的同时,积极关注细胞治疗,希望从根本上修复受损的组织器官,彻底解除患者的病痛。
干细胞是一类具有自我更新和多向分化潜能的特殊细胞,理论上可以实现组织器官的再生。目前研究的干细胞分两类:胚胎干细胞和成体干细胞。胚胎干细胞由于受到伦理学问题、取材困难以及免疫排斥等因素限制,给临床研究和应用带来很多困难。而成体干细胞虽然分化能力相对减弱,但可以自体移植,从而避免了免疫排斥等上诉问题。ADMSCs是成体干细胞的一种,来源于脂肪组织,与已经广泛研究的骨髓间充质干细胞相比,在分化潜能、表面抗原等方面十分相似,但又具有来源充足、取材方便、体外扩增时间短等优势,所以成为了干细胞研究领域的又一热点。
目前研究[1,4-5]已经证明ADMSCs可以成功分化为骨、软骨、骨骼肌、心肌、血管内皮、脂肪、神经等组织细胞,并且可以作为目的基因的载体[6],移植后可以改善相应的机体功能。2006年Timper K等[7]报道,ADMSCs可以成功诱导分化为分泌胰岛素的细胞。但ADMSCs在实际应用中还有许多问题有待进一步研究:如ADMSCs移植到体内或梗死区后能否继续存活,怎样提高移植细胞在梗死区的存活率;ADMSCs在梗死区能够起到修复组织、改善功能的作用,具体机制是什么; ADMSCs发育的基因调控和微环境影响等问题还需要系统的研究。
过氧化氢(H2O2)是一种强氧化剂,在Fe2 + 、Cu2 +等金属离子存在下,与超氧阴离子反应生成羟自由基•OH,从而引发脂质过氧化,导致细胞损伤。 LDH水平的升高是细胞受损的一个敏感指标,细胞释放LDH增加通常反映细胞受损、细胞膜通透性增加[8]。研究[9]发现在心肌缺血和缺血再灌注损伤时H2O2生成明显增多,使损伤进一步加重。本实验用H2O2作用于ADMSCs,模拟ADMSCs移植到心肌梗死区的损伤,加用地黄多糖干预,通过检测细胞存活情况和培养上清中LDH的水平,来观察地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs是否具有保护作用,探索提高ADMSCs在有害环境中存活的有利因素,为ADMSCs的临床应用提供实验依据。
地黄多糖是中药地黄的主要有效成分,从地黄的根茎中提取,具有促进造血细胞增殖、增强免疫力、抗衰老、保护心、脑、肾脏和胃黏膜等多种生物学功能[10-12]。研究[13]表明地黄提取物可以不同程度的对抗肝微粒体脂质过氧化,其机理可能是通过提高血中的抗氧化相关酶,如―氧化氮合酶(NOS)、超氧化物歧化酶(SOD)等的活性,从而降低组织的过氧化脂质水平。本实验选取不同浓度地黄多糖作用于ADMSCs 24h,然后各组均加入250μmol/LH2O2继续培养2h,观察地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs的影响。
实验初步发现250μmol/LH2O2作用ADMSCs2h后,损伤组与正常对照组相比OD值明显减小(P
本实验在成功分离培养ADMSCs的同时,用H2O2作用于ADMSCs,模拟ADMSCs移植到心肌梗死区的损伤,观察了地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs的影响。初步证明了地黄多糖对H2O2损伤ADMSCs具有保护作用,为ADMSCs早日应用于临床提供了重要的实验依据。
参考文献
[1]Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies[J]. Tissue Eng, 2001,7:211-228.
[2]高治平. 熟地黄对雌性小鼠老化进程中雌、孕激素受体含量的上调作用[J]. 山西中医学院学报, 2000,1:1-3.
[3]陈丁丁,戴德哉,章涛.地黄煎剂抑制异丙肾上腺素诱发的缺血大鼠脑Ca2+,Mg2+-ATP 酶活力升高[J].中药药理与临床,1996,12:22-24.
[4]Cao Y, Sun Z, Liao L, et al.Human adipose tissue-derived stem cells differentiate into endothelial cells in vitro and improve postnatal neovascularization in vivo[J]. Biochem Biophys Res Commun,2005,332:370-379.
[5] Safford KM, Hicok KC, Safford SD, et al.Neurogenic differentiation of murine and human adipose-derived stromal cells[J]. Biochem Biophys Res Commun,2002,294:371-379.
[6]Kang Y, Liao WM, Yuan ZH, et al.In vitro and in vivo induction of bone formation based on adeno-associated virus-mediated BMP-7 gene therapy using human adipose-derived mesenchymal stem cells[J]. Acta Pharmacol Sin,2007,28:839-849.
[7]Timper K, Seboek D, Eberhardt M, et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells differentiate into insulin, somatostatin, and glucagon expressing cells[J]. Biochem Biophys Res Commun,2006,341:1135-1140.
[8]Li WG, Francis J, Miller J, et al. H2O2-induced superoxide anion production by a non-phagocytic NAD(P)H oxidase cause oxidant injury[J]. J Biol Chem,2001,276:29251-29256.
[9]Sheng R, Gu ZL, Xie ML, et al. EGCG inhibits cardiomyocyte apoptosis in pressure overload-induced cardiac hypertrophy and protects cardiomyocytes from oxidative stress in rats[J]. Acta Pharmacol Sin,2007,28:191-201.
[10]刘福君,程军平,赵修南,等. 地黄多糖对正常小鼠造血干细胞、祖细胞及外周血象的影响[J].中药药理与临床, 1996,12 :12-14.
[11]陈力镇,冯杏婉,周金黄. 地黄多糖b 对正常及S2180 荷瘤小鼠T 淋巴细胞功能的影响[J].中国药理学与毒理学杂志, 1994,8 :125-127.
[12]陈丁丁,戴德哉,章涛.地黄煎剂抑制异丙肾上腺素诱发的缺血大鼠脑Ca2 +,Mg2 +-ATP 酶活力升高[J].中药药理与临床,1996,12: 22-24.
[13]裘月,杜冠华,屈志炜,等.常用补益中药抗脂质过氧化作用比较[J].中国药学杂志,1996,31 :83-86.