首页 > 范文大全 > 正文

补肾丹对衰老模型大鼠脑海马组织P53基因表达的影响

开篇:润墨网以专业的文秘视角,为您筛选了一篇补肾丹对衰老模型大鼠脑海马组织P53基因表达的影响范文,如需获取更多写作素材,在线客服老师一对一协助。欢迎您的阅读与分享!

摘 要:目的:观察补肾丹对衰老模型大鼠海马组织p53基因表达影响。方法:将清洁级健康Wistar雄性大鼠,随机分为7组:正常对照组、金匮肾气丸组、补肾丹高、中、低剂量组、维生素E组、模型组。除正常对照组外各组腹腔注射D-gal(250mg・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】)60天,采用D-半乳糖致亚急性衰老法【sup】[1]【/sup】,造成大鼠拟衰老动物模型。同时,正常对照组和模型对照组给等体积的生理盐水,金匮肾气丸组同时给予金匮肾气丸(0.72g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】)灌胃,补肾丹高、中、低剂量组同时分别给予相当于生药2.7g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】、1.35g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】、0.675g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】灌胃。维生素E组每日灌服维生素E0.027g/kg,每日1次,共60天。用RT-PCR法和Western-blot法对衰老模型大鼠脑海马组织P53基因表达水平进行检测。结果:补肾丹高、中、低剂量组可抑制凋亡相关基因――P53基因的过度表达,与模型组比较有统计学意义(P

关键词:补肾丹;P53基因;RT-PCR;Western-blot

中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:1673-7717(2011)04-0899-02

收稿日期:2010-11-17

作者简介:汪淼(1979-)女,助理研究员,博士,研究方向:中医基础理论。

通讯作者:谢宁(1957-),男,湖北潜江人,教授,博士研究生导师,研究方向:中医基础理论。

随着老龄化国家增多,老龄人口的比率加大,人口的老龄化将成为一个社会问题。据联合国统计,至2000年全世界65岁以上的老人达到5.78亿。因此, 如何提高老年人的生活质量,成为近年来医学研究的热门课题。“补肾丹”的拟订是以民间验方为基础,结合历代著名医家治疗肾虚证的经验和大量的文献资料所创制的。本实验观察了补肾丹对衰老模型大鼠脑海马组织P53基因表达的影响,并与金匮肾气丸组及维生素E组比较,结果提示补肾丹能够抑制P53基因的过度表达。现将实验结果报道如下。

1 实验材料

动物:清洁级Wistar大鼠,雄性,体重(200±20)g。

药物:补肾丹由熟地、山药、山茱萸、枸杞子、等十四味组成,黑龙江省中西医结合研究所制剂室提供。金匮肾气丸:哈尔滨世一堂制药厂生产。维生素E:大连南美制药有限公司,国药准字:H210211947。购自人民同泰大药房。福临门大豆油(一级):北海粮油工业(天津)有限公司制造。D- gal:上海华舜生物工程有限公司(批号707222)。

饲料:普通饲料由黑龙江中医药大学实验动物中心提供。

2 方 法

分组与给药:将清洁级健康Wistar雄性大鼠,随机分为7组:正常对照组、金匮肾气丸组、补肾丹高、中、低剂量组、维生素E组、模型组。除正常对照组外各组腹腔注射D-gal(250mg・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】)60天,采用D-半乳糖致亚急性衰老法【sup】[1]【/sup】,造成大鼠拟衰老动物模型。同时,正常对照组和模型对照组给等体积的生理盐水,金匮肾气丸组同时给予金匮肾气丸(0.72g/ kg・d)灌胃,补肾丹高、中、低剂量组同时分别给予相当于生药2.7g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】、1.35g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】、0.675g・kg【sup】-1【/sup】・d【sup】-1【/sup】灌胃。维生素E组每日灌服维生素E0.027g/kg,每日1次,共60天。

3 结 果

3.1 RT-PCR法检测补肾丹对衰老模型大鼠P53基因表达的影响 见表1,图1。

表1 补肾丹对衰老模型大鼠P53基因表达的影响(±s)

注:与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01;与正常对照组比较,P<0.05,P<0.01。

RT-PCR法检测结果提示,D-gal可诱发大鼠海马区域P53mRNA表达增加(P

3.2 Western-blot法检测补肾丹对衰老模型大鼠P53基因表达的影响 见表2图2。

表2 Western-blot法检测补肾丹对衰

老模型大鼠P53基因表达的影响(±s)

注:与模型组比较,*P<0.05,**P<0.01;与正常对照组比较,P<0.05 ,P<0.01。

P53与内参蛋白β-actin的western-blot的灰度比(GSR)能反映出P53蛋白的表达水平。其计算方法为:测得的目的蛋白的强度×面积/内参蛋白β-actin的强度×面积。因此密度灰度比越大,P53的表达水平就越高。模型组P53的GSR显著增高,与正常对照组比较有显著性差异(P

图2 补肾丹对衰老模型大鼠P53基因表达图谱

4 讨 论

细胞凋亡,又称细胞程序性死亡(Programmed cell death,PCD),是指细胞在一定的生理或病理条件下,遵循自身的程序,自己结束其生命的过程,最后细胞脱落离体或裂解为若干凋亡小体,被其它细胞吞噬【sup】[2]【/sup】,是一种受基因控制的生理性细胞死亡。但过量自由基会刺激细胞凋亡,进而引起机体的衰老【sup】[3]【/sup】。

凋亡是细胞内在的决定动物发育和组织平衡的一个重要机制。这个受到严密调控的细胞自杀机制一旦出现功能障碍或失去控制,将导致机体产生肿瘤、神经退行性疾病或其他病理性变化。机体内多种因素参与了细胞凋亡,机体的生长、发育及衰老均与细胞凋亡密切相关。由于衰老生物体在生命过程中随时间推移发生形态、结构、生理功能等方面一系列慢性、退行性变化,因此认为细胞的程序对衰老起主动作用,并引起特征性形态改变及衰老性生长停滞,细胞的衰老死亡实质就是细胞凋亡。现已表明,机体内环境的稳定主要与中枢神经系统有关,所以,中枢神经系统的老化在机体衰老中占主导地位,其病理变化主要见于大脑皮质和海马。因此研究海马组织神经细胞凋亡情况,对于探讨中枢神经系统衰老进程及其机理具有十分重要的意义。P53基因是细胞凋亡的关键基因【sup】[4] 【/sup】。

P53位于人类染色体17q13.1,含11个外显子,其转录翻译编码的野生型P53蛋白是由393个氨基酸残基组成的磷酸白,包含多个功能域。在一定条件下,P53不仅能诱导细胞发生凋亡或生长抑制,而且与细胞衰老关系密切【sup】[5-10]【/sup】。此外,P53是细胞内的“分子警察”、基因组的卫士,具有非常重要而复杂的生理功能,主要在DNA损伤时被激活,使细胞阻滞在G1期,以便在DNA开始合成前进行损伤修复;若损伤的DNA不能修复,则诱导细胞凋亡【sup】[11]【/sup】。研究也表明此基因表达量的升高会导致凋亡的发生,过度的凋亡就会导致衰老的发生和加速【sup】[12]【/sup】。可见P53对细胞衰老的发生和维持所起到的关键作用【sup】[13-15]【/sup】,因此,严格调控细胞内P53蛋白的活性水平是完全必要的【sup】[16]【/sup】。

本实验应用RT-PCR和Western Blot的方法,检测补肾丹对D-半乳糖所致亚急性衰老模型大鼠脑海马组织P53基因表达的影响。结果表明,衰老模型大鼠的P53基因表达明显增高,与空白组比较有统计学意义(P

参考文献

[1] 刘学丽,朱延勤,潘伟娜,等.对人鼠半乳糖性自内障实验模型的探讨[J].北京实验动物科学与管理,1994,11(2):2-3.

[2] Kuan Nk, Passaro E Jr.Apoptosis: programmed cell death[J].Arch Surg, 1998, 133 (7):773-775.

[3] Yand E, Korameyer SJ. Molecular mechanis of apoptosis: a discourse on the bcl-2 family and cell death Blood[J]. 1996: 88(2):386.

[4] Uren AG, Vaux DL.Molecular and clinical aspects of apoptosis[J]. Pharmacol Ther,1996, 72(1):37.

[5] Levine A J. p53, the cellular gatekeeper for growth and division[J]. Cell,1997,88:323-331.

[6] KoL J.Prives C.p53:puzz leand paradigm[J].Genes & Development,1996,10:1054-1072.

[7] Gottlieb T M,Oren M.P53 in growth control and neoplasia[J]. Biochimica et Biophysics Acta,1996,12:77.

[8] El-Deiry W S. Regulation of p53 downstream genes[J]. Seminars in Cancer Biology, 1998, 8:345-357.

[9] Smith J R, Pereira-Smith O M. Replicative senescence: Implications for in vivo aging and tumor suppression[J]. Science, 1996, 273: 63-66.

[10] Chin L, Artand S E, Shen Q, et al. p53 deficiency rescues the adverse effects of telomere loss and cooperates with telomere dysfunction to accelerate carcinogenesis[J].Cell,1999,97:527-538.

[11] 曾新益,肿瘤学[M].北京:人民卫生出版社,1999:59-63.

[12] Chen QM, Liu J,Mc.Merrett JB. Apoptosis or senescence-like growth arrest: influence of cell-cycle position, p53, p21 and bax in H2O2 response of normal human fibroblasts[J].Biochem J,2000,15:347:543-551.

[13] Ben-Porath I,Weinberg RA.The signals and pathways activating cellular senescence[J].Int J Biochem Cell Biol,2005,37(5):961-976.

[14] Judith Campisi.Senescent Cells,Tumor Suppression,and Organismal Aging:Good Citizens, Bad Neighbors[J].Cell,2005,120(4):513-522.

[15] Paul Hasty, Jan Vijg.Accelerating aging by mouse reverse genetics:a rational approach to understanding longevity[J].Aging Cell,2004,3:55-65.

[16] Gottlieb T M, Oren M. p53 in growth control and neoplasia[J]. Biochimica et Biophysics Acta,1996,1287:77-102.