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塞拉菌素制剂的豚鼠最大化试验和Buehler试验

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摘要:为检验塞拉菌素制剂对皮肤的过敏性,以化学药物指导原则为指导,进行了豚鼠最大化试验(GPMT)和Buehler豚鼠封闭斑贴试验(BT)。用2,4-二硝基氯苯溶液作为阳性对照物,在GPMT试验和BT试验的阳性对照组的致敏率分别为80%和70%,对豚鼠的致敏率较高,2个试验受试物组的致敏率均为0,表明塞拉菌素对豚鼠没有致敏性。

关键词:塞拉菌素;豚鼠;斑贴试验;最大化试验

中图分类号:R978.1文献标识码:A文章编号:0439-8114(2011)08-1650-03

Guinea Pig Maximination Test and Buehler Test for Selamectin Preparation

WANG Fang,ZHANG Ji-yu,ZHOU Xu-zheng,LI Jin-shan,LI Jian-yong,LI Bing,NIU Jian-rong,

WEI Xiao-juan,YANG Ya-jun

(Lanzhou Institute of Animal Science and Veterinary Pharmaceutics, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Lanzhou 730050, China)

Abstract: To measure the skin sensitization, the guinea pig maximination test (GPMT) and Buehler test (BT) for selamectin preparation were performed according to the guidance of chemistry medicine. The results showed that the sensitization rate of the positive control group which used 2,4-dinitrochlorobenzene solution in GPMT test and BT test was 80% and 70%, respectively; while the sensitization rate of the test group in both tests were zero. The results proved that there was no sensitization of selamectin to guinea pigs.

Key words: selamectin; guinea pig; Buehler test; maximination text

塞拉菌素是由基因重组的阿维链霉菌(Streptomyces vermitilis)新菌株发酵而成的阿维菌素类抗生素,是一种兼具抗体内、体外寄生虫双重作用的新型广谱抗寄生虫药[1],对蜱、螨、蚤、虱、恶丝虫、部分线虫有驱杀效果[2-7]。该药目前主要被开发为犬猫专用的透皮制剂,为研究该制剂的皮肤过敏性,试验进行了豚鼠最大化试验和封闭斑贴试验。

1材料和方法

1.1供试药品

塞拉菌素制剂,规格45mg∶0.75mL,购至浙江海正药业股份有限公司;0.1%和1%的2,4-二硝基氯苯溶液(上海中秦化学试剂有限公司)。

1.2试验动物

成年白色豚鼠,未孕雌性,体重250~300 g。每次给药前24 h给豚鼠肩背部脱毛,面积为3 cm×3 cm。试验完后称量动物体重。

1.3试验方法

1)预试验。皮内注射试验:随机选取试验动物16只分为4组,每组4只,于每只豚鼠肩背部去毛区分4点一次性皮下给予不同剂量的塞拉菌素溶液,给药点间距1.5 cm,给药后24 h和48 h观察注射点红斑、水肿和溃烂情况。各试验组注射剂量分别为0.2 mL、0.1 mL、0.05 mL、0.01 mL。选取注射点皮肤不产生溃烂的剂量为皮内注射剂量。

豚鼠封闭斑贴试验:随机选取试验动物16只分成4组,每组4只,于每只豚鼠肩背部去毛区一次性斑贴不同剂量的塞拉菌素溶液,封闭贴敷24 h,进行激发接触。在去除受试物后的12 h内观察动物去毛区皮肤红斑水肿情况。各试验组剂量分别为0.5 mL、0.25 mL、0.1 mL、0.05 mL。选取可产生轻度刺激性的剂量作为第一次斑贴剂量,选取不产生刺激性的最大剂量作为第二次斑贴剂量。斑贴试验操作:用医用凡士林涂皮,将药物吸附在1cm×1cm的滤纸上贴敷于皮肤表面,用塑料薄膜(保鲜膜)覆盖,最后用胶布将斑贴缠绕固定,松紧程度以不影响豚鼠活动又能固定斑贴为宜。

2)正式试验。豚鼠最大化试验(GPMT):随机选取40只豚鼠,试验组20只,阳性对照组和阴性对照组各10只。第0天,豚鼠皮内注射给药进行诱导。第七天后皮肤斑贴给予药物再次进行诱导,第21天皮肤斑贴给予激发剂量24 h,在去除激发剂量24 h、48 h和72 h后观察皮肤红斑、水肿和其他异常反应,按表1对红斑和水肿进行评分,按表2进行过敏反应强度评价。若结果难以判定,7 d后再次激发。阳性对照组用70%乙醇配成溶液,皮内注射的药物浓度为0.1%,剂量为0.10 mL,第一次斑贴诱导浓度和第二次斑贴致敏浓度分别是1.0%和0.1%,剂量均为0.2 mL(见表3)。

Buehler豚鼠封闭斑贴试验(BT):随机选取40只豚鼠,试验组20只,阳性对照组和阴性对照组各10只。第0、7和14天用封闭片局部给药以诱导,第28天在未给药的肋腹部贴6 h以局部激发。去除封闭片24 h、48 h和72 h后观察皮肤红斑、水肿和其他异常反应,按表1对红斑和水肿进行评分,按表2进行过敏反应强度评价。若结果难以判定,7天后再次激发。阳性对照组用70%乙醇配成溶液,诱导浓度和致敏浓度分别是1.0%和0.1%,剂量均为0.2mL(见表4)。

结果评价标准:

反应平均值=

根据表2判断过敏反应发生程度。

2试验结果

2.1预试验

皮内注射试验测得第一次诱导剂量为0.05 mL。

斑贴诱导剂量和斑贴激发剂量分别是0.25 mL、0.05 mL。

2.2正式试验

试验结果见表5,GPMT试验中阳性对照组有8只豚鼠发生不同程度的红斑、水肿,致敏率为80%,故对豚鼠有高度的致敏性,在去除激发剂量后的48 h和72 h红斑和水肿症状变轻。阴性对照组和试验组均无红斑和水肿出现,表明塞拉菌素的致敏率为0。

试验结果见表6,BT试验中阳性对照组有7只豚鼠发生不同程度的红斑、水肿,致敏率为70%,对豚鼠的致敏性较高,在去除激发剂量后的48 h和72 h红斑和水肿症状变轻。阴性对照组和试验组均无红斑和水肿出现,表明塞拉菌素的致敏率为0。

3讨论

豚鼠血清内含有丰富的补体,当豚鼠再次接触致敏原时比其他动物更容易产生过敏反应,因此本试验选用豚鼠作为试验对象。

饲养环境会对豚鼠的生理代谢、免疫产生影响,甚至会对豚鼠产生应激,故试验过程中严格控制饲养环境,室温25℃左右、湿度60%左右,注意通风换气,定期添加垫料,每天更换新鲜的饮水。由于豚鼠需要更多的纤维素食物和维生素,故每天额外定量饲喂白菜100 g/只、胡萝卜50g/只,以保证豚鼠正常生长需求。

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试验结束后称量动物体重均在400~500 g,故该药物以及该试验不影响动物生长。

本试验以《化学药物刺激性、过敏性和溶血性 研究技术指导原则》为指导[8],经预试验得出塞拉菌素制剂的致敏剂量和激发剂量,两个剂量均大于临床使用剂量6 mg/kg。此外,指导原则中对动物的保定未作详细描述,在不影响动物正常活动的前提下,对给药斑贴部位进行固定。GPMT和BT试验过程中所有豚鼠精神状态良好,饮食较好,活动正常,未出现不良反应,故受试物塞拉菌素制剂在注射量6 mg/kg条件下,对豚鼠没有过敏性,为其在临床上的安全使用奠定了理论基础。

参考文献:

[1] BRUCE C I, BISHOP B F, EVANS, et al. Selamectin of a Topical Formulation for UK-124,114-a Novel Avermectin Endecticide for Dogs and Cats. Proceedings of the 5th International Symposium on Ectoparasites of Pets; April 11-13,1999; Fort Collins, CO,USA.

[2] JERNIGAN A D, MCTIER T L, CHIEFFO C, et al. Efficacy of selamectin against experimentally induced tick (Rhipicephalussanguineus and Dermacentor variabilis) infestations on dogs [J]. Veterinary Parasitology, 2000, 91(3-4): 132-138.

[3] KURTDEDE. A, KARAER. Z, ACAR. A. Use of selamectin for the treatment of psoroptic and sarcoptic mite infestation in rabbits[J]. Veterinary dermatology, 2007,18:18-22.

[4] SHANKS D J, GAUTIER R, CTIER I L, et al. Efficacy of selamectin against biting lice on dogs and cats[J]. The Veterinary Record, 2003, 152: 234-237.

[5] MCCOY C, BROCE A B, DRYDEN M W, et al. Flea blood feeding patterns in cats treated with oral nitenpyram and the topical insecticides imidacloprid, fipronil and selamectin[J]. Veterinary Parasitology, 2008, 156: 293-301.

[6] MCTIER T L, SHANKS D J, WATSON P, et al. Prevention of experimentally induced heartworm (Dirofilaria immitis)infections in dogs and cats with a single topical application ofselamectin[J]. Veterinary Parasitology,2000,91(3-4):259-268.

[7] WANG T, YANG G Y, YAN H J, et al. Comparison of efficacy of selamectin, ivermectin and mebendazole for the control of gastrointestinal nematodes in rhesus macaques, China[J]. Veterinary Parasitology,2008,153(5):121-125.

[8] 《化学药物刺激性、过敏性和溶血性研究技术指导原则》课题研究组.化学药物刺激性、过敏性和溶血性研究技术指导原则[Z]. 2005,5-7.

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