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灭多威对家蝇胚胎细胞系细胞色素C及Caspase 3的影响

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摘要:为寻找家蝇防治新靶点提供新的思路,研究灭多威作用于家蝇胚胎细胞系MDEC-07114细胞后对细胞色素C和caspase 3的影响。用4 mg/mL灭多威干预MDEC-07114后,分别于加药后2、6、12、24 h收集细胞,用蛋白质印迹法(Western blot)检测细胞色素C和Caspase 3的表达。结果表明,细胞色素C随作用时间的延长释放增多,Caspase 3随作用时间的延长活性增强。根据试验结果,推测灭多威可能是通过损伤线粒体膜,引起细胞色素C的释放,进而激活Caspase 3,发生蛋白酶级联反应,从而导致MDEC-07114细胞凋亡。

关键词:家蝇胚胎细胞系;MDEC-07114细胞;灭多威;细胞色素C;Caspase 3

中图分类号:Q965.9 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2013)22-5482-03

昆虫细胞凋亡途径,尤其是类似哺乳动物细胞的线粒体途径中细胞色素C(CytC)的释放,在不同昆虫的研究中结论有所不同[1-5]。MDEC-07114是遵义医学院自建的家蝇胚胎细胞系,灭多威为常用氨基甲酸酯类杀虫剂。前期研究表明灭多威可以诱导MDEC-07114细胞凋亡,并且引起线粒体变化[6]。本试验拟研究灭多威作用于MDEC-07114细胞后对细胞色素C和Caspase 3的影响,探讨线粒体途径在MDEC-07114细胞凋亡中的作用。

1 材料与方法

1.1 供试细胞

家蝇胚胎细胞系MDEC-07114,由遵义医学院寄生虫学教研室提供。

1.2 试剂及仪器

1.2.1 主要试剂 M3培养基,Sigma公司生产,S3652型;胎牛血清,杭州四季青生物工程研究所生产;99.9%灭多威,北京恒元启天化工技术研究院生产;PVDF膜,Millipore公司生产;蛋白预染Marker、RIPA裂解液,碧云天生物技术有限公司生产。

1.2.2 主要仪器 Mini Protean 3 Cell小型垂直电泳槽,美国BIO-RAD公司生产;SP-9型电转仪,大连竞迈科技有限公司生产;Odyssey双色红外荧光成像系统,美国LI-COR公司生产。

1.3 方法

1.3.1 MDEC-07114细胞培养 取液氮冻存的MDEC-07114复苏传代,28 ℃ 5% CO2孵育箱中培养[7],待生长稳定后进行试验。

1.3.2 试验分组 处理组为4 mg/mL灭多威组,对照组为等量的培养基。分别于加药后2、6、12、24 h收集细胞。

1.3.3 蛋白质印迹法(Western blot)检测CytC、Capase 3 收集细胞,PBS洗涤,1 000 r/min离心5 min,加入RIPA裂解液,冰上裂解20 min,4 ℃ 12 000 r/min离心20 min获得总蛋白;用Bradford蛋白浓度测定试剂盒测定蛋白质浓度。每孔上40 μg总蛋白,12%聚丙烯酰胺凝胶电泳,电压100 V恒压,15 min;120 V恒压,90 min。电泳结束后,半干转印90 min,PBS清洗3次,每次5 min;加入封闭液4 ℃封闭过夜;PBS清洗3次,每次5 min;加入一抗,室温孵育2 h;PBST清洗3次,每次5 min;加入二抗,室温孵育2 h;PBST洗涤3次,每次5 min。X光压片显影,Odyssey远红外成像系统扫膜,读取OD值。

1.4 数据处理

所有数据用平均值±标准差(x±s)表示,SPSS软件包辅助处理,单因素方差分析,t检验,P

2 结果与分析

2.1 CytC水平的变化

灭多威作用于MDEC-07114细胞后对CytC的影响见图1、图2。4 mg/mL灭多威作用于MDEC-07114细胞后,CytC水平随时间的延长逐渐增加,与对照组差异显著。说明随作用时间的延长,CytC释放增加。

2.2 Capase 3活性变化

灭多威作用于MDEC-07114细胞后对Caspase 3的影响见图3、图4。Western blot检测结果显示,4 mg/mL灭多威作用于MDEC-07114后,Caspase 3活性随作用时间延长逐渐增加,与对照组差异显著。

3 小结与讨论

对哺乳动物中线粒体信号途径介导的细胞凋亡机制研究认为,线粒体在凋亡过程中可能起着中心调控作用,可通过释放CytC导致凋亡发生[8]。正常情况下CytC位于线粒体内、外膜之间,凋亡刺激物可引起CytC从线粒体易位释放入胞浆,并与胞浆中的凋亡蛋白水解酶活化因子(Apaf-1)结合形成CytC/Apaf-1复合物,激活Caspase 9,活化的Caspase 9激活Caspase 3,从而启动了Caspase级联反应,导致凋亡发生[9]。而在有关果蝇细胞凋亡的研究报道中,不同细胞的凋亡过程CytC的作用有所不同。在果蝇的胚胎细胞和的凋亡过程中,CytC发挥着重要的作用[10,11],而在果蝇S2和BG2细胞系的凋亡过程中,CytC并未从线粒体中释放,未参与凋亡体的形成[12,13]。关于家蝇细胞凋亡途径的研究鲜有报道。本研究用灭多威作用于MDEC-07114细胞,Western Blot检测显示细胞色素C随作用时间的延长释放增多,Caspase 3随作用时间的延长其活性增强。

前期研究发现,灭多威作用于MDEC-07114细胞后,可引起线粒体结构改变,线粒体膜电位降低。由此推测,灭多威诱导家蝇细胞凋亡可能是通过损伤线粒体膜,引起细胞色素C的释放,进而激活Caspase 3,启动Caspase细胞凋亡通路,进而导致细胞凋亡。

参考文献:

[1] SAHDEV S,TANEJA T K,MOHAN M,et al. Baculoviral p35 inhibits oxidant-induced activation of mitochondrial apoptotic pathway[J]. Biochem Biophys Res Commun,2003,307(3):483-490.

[2] MALAGOLI D, IACCONI I, MARCHESINI E, et a1.Cell-death mechanisms in the IPLB-LdFb insect cell line: a nuclear located Bcl-2-like molecule as a possible controller of 2-deoxy -D-ribosw-mediated DNA fragmentation[J]. Cell Tissure Res,2005,320(2):337-343.

[3] KANUKA H, SAWAMOTO K,INOHARA N, et al. Control of the death pathway by Dapaf-1,a Drosophila Apaf-1/CED-4-related caspase activator[J]. Mol Cell,1999,4(5):757-769.

[4] VARKEY J,CHEN P,JEMMERSON R, et al. Altered cytochrome C display precedes apoptotic cell death in Drosophila[J]. J Cell Biol,1999,144(4):701-710.

[5] DORSTYN L,READ S,CAKOUROS D,et al. The role of cytochrome C in caspase activation in Drosophila melanogaster cells[J]. J Cell Biol,2002,156(6):1089-1098.

[6] 谢 偲,贺莉芳,刘 晖,等.灭多威对离体培养MDEC-07114细胞的抑制作用[J].安徽农业科学,2010,38(7):3346-3349.

[7] 贺莉芳,万启惠,刘 晖,等.家蝇细胞系建立及其生物学特性[J].昆虫知识,2009,46(5):788-790.

[8] 张闻多,丁文惠.细胞凋亡与凋亡诱导因子[J].中国病理生理杂志,2006,2(9):1858-1862.

[9] RIEDL S J, SALVESEN G S. The apoptosome: Signalling plat-form of cell death[J]. Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8(5):405-413.

[10] MEANS J C,MURO I,CLEM R J.Lack of involvement of mitochondrial factors in caspase activation in a Drosophila cell free system[J].Cell Death Differ,2006,13(7):1222-1234.

[11] ARAMA E,BADER M, SRIVASTAVA M, et al. The two Drosophila cytochrome C proteins can function in both respiration and caspase activation[J].EMBO J,2006,25(1):232-243.

[12] YU X,WANG L,ACEHAN D,et a1.Three-dimensional structure of a double apoptosome formed by the Drosophila Apaf-1 related killer[J].J Mol Biol,2006,355(3):577-589.

[13] DORSTYN L,MILLS K,LAZEBNIK Y,et a1.The two cytochrome cspecies,DC3 and DC4,are not required for caspase activation andapoptosis in Drosophila cells[J]. J Cell Biol, 2004,167(3):405-410.