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NS-398和抗癌药联用对胃癌细胞增殖的影响

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[摘要] 目的 探讨选择性环氧合酶-2(COX-2)抑制剂ns-398抗癌药5-氟尿嘧啶(5-FU)联用胃癌细胞增殖影响。方法 不同浓度的NS-398与10μg/mL的5-FU单用、联用48h。四甲基偶氮唑盐(MTT)法检测各组抑制率,应用中效原理和金正均法判定选择性环氧合酶-2抑制剂与抗癌药联用的效果。结果 两药单独应用时药物浓度和抑制率呈量效关系,其效应随药物浓度的增加而增加;两种药物联用抑制率均高于单用,具有协同作用。结论 NS-398与5-FU联用后起协同作用,可以作为5-FU的化疗增敏剂。

[关键词] 胃肿瘤; 环氧合酶抑制剂; 化疗药物; 生长抑制

[中图分类号] R735.2 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2010)03-16-02

胃癌是我国最常见的三大肿瘤之一,其发病率和病死率都超过了世界平均水平。联合用药是临床上治疗肿瘤的常用策略,其目的是为了获取协同作用[1]。研究表明,抑制环氧合酶-2(COX-2)在非甾体抗炎药(NASAIDs)肿瘤化学预防中起重要的作用。在人类多种肿瘤中,包括消化道肿瘤均存在过表达[2,3]。另外研究发现,COX-2抑制剂可抑制多种肿瘤的生长[4]。5-氟尿嘧啶(5-FU)是临床上治疗胃癌等消化道系统肿瘤的常用药物。本实验观察环氧合酶-2抑制剂NS-398和抗癌药5-FU单用和联用时对体外培养的人胃癌细胞系SGC-7901生长的抑制作用,为胃癌的治疗提供新的依据。

1 材料与方法

1.1 材料

胃癌细胞株SGC-7901(中国科学院上海生命科学研究院细胞库)、NS-398(美国Cayman公司)、5-FU(Sigma公司),RPMI- 1640培养基(美国Gibco BRL公司)、胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司)、二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)(淮安和元化工有限公司),四甲基偶氮唑蓝(MTT)(北京夏斯生物技术有限公司)。

1.2 主要仪器

倒置显微镜(重庆光学仪器厂)、超低温冰箱(日本Sanyo公司)、CO2培养箱(美国Revco)、公司无菌工作台(北京市新技术应用研究所)、紫外分光光度计(美国Gene Company Limited 公司)。

1.3 方法

1.3.1 细胞培养 胃癌细胞株SGC-7901培养于含10%胎牛血清、100U/mL青霉素和100μg/mL链霉素的RMPI-1640的培养液中,培养条件为37℃,5%CO2,饱和湿度,2~3d传代1次。

1.3.2 药物的配制及浓度设计 按照说明书用DMSO分别溶解NS-398和5-FU配制成终浓度为1mmol/L的NS-398和1mg/mL的5-FU,各组的DMSO浓度不超过0.1%,本实验设计的浓度为:10、100、1000μmol/L的NS-398和10μg/mL的5-FU。

1.3.3 MTT法检测细胞的增殖活性 取对数生长期的SGC- 7901细胞,胰酶消化细胞,以每孔1×105个细胞接种于96孔板中,每孔体积200μL,37℃,5%CO2条件下培养24h。分别加入DMSO溶解的不同浓度的NS-398(10、100、1000μmol/L)和10μg/mL的5-FU进行实验。设各浓度NS-398单独处理组、5-FU单独处理组、各浓度NS-398与5-FU联合处理组,每个处理组同时设DMSO对照组和SGC-7901细胞空白对照组,各四个复孔。加入相应药物和试剂孵育48h,孵育结束前4h加入5g/L的MTT溶液20μL。吸去上清,每孔加入150μL二甲基亚砜,振荡10min,使结晶充分溶解,1h内用分光光度计在570nm处测定吸光度(A),计算细胞增殖抑制率。细胞增殖抑制率=(1-实验组A值/细胞空白对照组A值)×100%。重复3次,取其平均值。

1.3.4 药物相互作用判断 (1)中效原理[5]:两药合用指数(CI)1时,有拮抗作用;CI=1时,有相加作用。(2)金正均[6]合并用药相加原则:当q>1.15时,有协同作用;q

1.3.5 统计学方法 采用方差分析进行组间比较,SNK-q检验法进行两两比较,并采用完全随机设计的t检验对同一浓度的NS-398单用及其与5-FU联合应用进行检验。

2 结果

2.1 不同浓度的NS-398单独应用对胃癌细胞的抑制作用

MTT结果显示,NS-398对胃癌细胞的抑制率随着剂量的增加而增加,各剂量组之间的抑制率差异有统计学意义(P

2.2 不同浓度的NS-398与5-FU联用对胃癌细胞的抑制作用

与抗癌药联用时,抑制率均高于NS-398单用组和5-FU单用组,并显示了较好的剂量依赖性,表现为协同效应。见表1、表2。

3 讨论

COX-2是前列腺素合成过程中一个主要的限速酶,可将花生四烯酸代谢成各种前列腺产物,从而参与机体的多种病理生理过程,如炎症、发热、出凝血机制等。主要有COX-1和COX-2两种基因型,其中COX-2在许多肿瘤组织中高表达,在正常组织中不表达或弱表达,提示COX-2与肿瘤有关。

近年来COX-2与消化道肿瘤的关系日益受到重视,Thun等[7]研究发现COX-2在胃癌组织中高表达。应用COX-2选择性抑制剂治疗和预防消化道肿瘤引起了人们的极大兴趣,研究表明COX-2在胃癌和结直肠癌的发生发展中起重要的调节作用,特异性COX-2抑制剂NS-398依赖性抑制结肠癌细胞增殖[8]。

MTT实验中吸光度值的大小可以反映细胞的增殖情况和代谢活性,因此应用MTT比色法可定量反映药物对细胞的生长抑制作用[9]。本研究通过MTT检测发现选择性环氧合酶-2抑制剂NS-398单独应用时能明显抑制胃癌细胞的增殖,且有剂量依赖性;NS-398和5-FU联用对SGC-7901的抑制作用强于两药单独应用时。

虽然研制和开发COX-2抑制剂已成为现今肿瘤治疗的一个热点,但直到现在COX-2抑制剂降低结肠癌和胃癌发病率的机制仍不是特别清楚。NS-398在肠道肿瘤主要通过诱导凋亡抑制肿瘤细胞生长[10],但具体机制并不清楚。抗癌药物作用于肿瘤细胞后并不能直接激活细胞凋亡程序,除药物浓度过高或细胞毒对该药物极其敏感的情况外,多数诱导细胞凋亡的抗癌药最初是影响细胞的增殖潜能。5-FU是胃癌患者常用的化疗药物之一,但胃癌患者出现的对化疗药物不敏感和高耐药性使其疗效大大折扣。本研究表明选择性环氧合酶-2抑制剂NS-398和5-FU联用的效果大大强于两药单用时,有可能两药联用使凋亡通路发挥了协同作用。因此,选择性COX-2抑制剂和化疗药物的联用将有可能成为胃癌治疗的一种新方法。

[参考文献]

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[6] 刘红英,张俐. 尼美舒利增强丝裂霉素抑制体外培养人胃癌细胞的细胞增殖及诱导调亡的实验研究[J]. 中华消化内镜杂志,2004,21(4):734-741.

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[9] Soslow RA,Dannenberg AJ,Rush D,et al. COX-2 is expressed in human pumomary,colonic,and mammary tumor[J]. Cancer,2000,89(12):2637- 2645.

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(收稿日期:2009-11-05)