首页 > 范文大全 > 正文

IL1β对人鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC5ACmRNA的表达的影响

开篇:润墨网以专业的文秘视角,为您筛选了一篇IL1β对人鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC5ACmRNA的表达的影响范文,如需获取更多写作素材,在线客服老师一对一协助。欢迎您的阅读与分享!

【摘要】 目的 探讨il1β对鼻黏膜上皮细胞蛋白muc5acmrna表达影响。方法 在培养的第二代人鼻黏膜上皮细胞加入IL1β(10ng/ml)刺激24 h后,采用荧光定量巢式RTPCR检测人鼻黏膜上皮细胞中MUC5AC mRNA的定量表达。结果 在培养的鼻黏膜上皮细胞上检测到MUC5ACmRNA的表达,IL1β刺激组MUC5ACmRNA定量表达 [(460±189) 108拷贝/μg]均高于对照组[(250±140) 107拷贝/μg],差异具有统计学意义(P

【关键词】

白细胞介素1β;黏蛋白;RTPCR

Effects of MUC5AC gene expression in human nasal epithelial cells lnduced by lnterleukin1beta

HUANG Xuekun, LI Yuan, LIU Hong, et al.Department of Otorhinolaryngology, the Third Affiliated Hospital of Sun YatSun University, Guangzhou, 510630,China

【Abstract】 Objective To demonstrate the effects of IL1β on MUC5AC gene expression in cultured human nasal epithelial cells Methods In passage2 cultured human nasal epithelial cells, the mRNA levels of MUC5AC gene expression induced by IL1β were determined by Fluorescent quantitative nested RTPCR Results MUC5AC mRNAs were detected after 24 h of exposure to IL1β MUC5AC mRNA levels in IL1β treatment [(460±189) 108copy/μg]] were significantly higher than control [(250±140) 107 copy/μg] (P

【Key words】

Interleukin1β; Mucin;RTPCR

黏蛋白是鼻腔鼻窦黏液的重要组成部分,决定着黏液的粘弹性。MUC5AC是主要的分泌型黏蛋白之一,已证实MUC5AC在慢性鼻鼻窦炎筛窦黏膜中表达增高[1],但黏蛋白MUC5AC的调节机制尚未明了。白介素1β(Interleukin1beta,IL1β)主要由活化的单核巨噬细胞产生,是一种重要的具有多种功能的前炎症细胞因子,在急性和慢性炎症中起重要作用,在CRS的上颌窦黏膜也检测到IL1βmRNA表达增高[2]。本研究在培养的人鼻黏膜上皮细胞IL1β刺激后,采用荧光定量巢式RTPCR检测鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC5ACmRNA表达,探讨IL1β对黏蛋白MUC5ACmRNA表达的影响。

1 资料与方法

11 鼻黏膜上皮细胞原代培养和传代培养

下鼻甲黏膜组织来自我科行鼻中隔手术患者(术前已征得患者同意),近期无应用糖皮质激素、抗组胺及抗生素药物史,无阿司匹林耐受不良、无哮喘病史。胎牛血清培养基配方、无血清培养基配方、鼻黏膜上皮细胞原代培养和传代培养方法同前[3]。术中取下鼻甲黏膜组织放入胎牛血清培养基的无菌离心管。在无菌室超净工作台里,以无齿小镊将黏膜块夹到烧杯里,抗生素液(含100 IU/ml青霉素、100 μg/ml链霉素的09%生理盐水)冲洗6~7遍,5 min/次。剪碎组织,加入01%胶原酶(Cibco公司),量为组织块体积的5倍,37°消化30 min。离心1000 r/min5 min,弃上清。沉淀中加入3 ml血清培养基,滴管吹打,加入培养瓶中,于37°5% CO2培养箱培养。培养24 h后吸取2/3的上清液弃去,更换为无血清培养基。原代培养第3天后,倒置显微镜观察,见大部分细胞贴壁,呈现鹅卵石隔日更换无血清培养基,放入37℃ CO2培养箱。黏膜上皮细胞生长,汇合成片时则需要传代。以吸管吸去旧的培养液,加无菌Hanks液洗细胞两遍。加入025%胰蛋白酶约50 μl/cm2,以恰好覆盖细胞为宜。在倒置显微镜下观察,当细胞质回缩,表示细胞脱落,90%细胞质回缩,细胞间隙增大后,轻轻吸去消化液,加入血清培养液,轻轻吹打,制成细胞悬液,以适当浓度种植到培养瓶中,置5% CO2培养箱中培养。培养24 h后更换为无血清培养基。

12IL1β刺激培养的鼻黏膜上皮细胞

取第二代培养的鼻黏膜上皮细胞,台盼兰染色细胞活性>95%,以5×105/ml转入6孔培养板中,进行无血清培养7~8 d后,上皮细胞接近完全融合。一组细胞加入含有IL1β(Peprotech公司)10ng/ml的无血清培养基(IL1β刺激组,n=4),另一组仅加入无血清培养基作为对照(对照组,n=4)。孵育24 h后采用荧光定量RTPCR检测培养的鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC5AC mRNA的表达。

13 荧光定量巢式RTPCR

131 细胞RNA的提取 直接往直径35 cm的培养板加TRIZol(Invitrogen公司) 1 ml,溶解细胞,提取总 RNA。置Eppendorf 管,15℃~30℃孵育5 min,加入氯仿(02 ml 氯仿/1 ml TRIZol),盖紧盖子,用力摇动15 s,15℃~30℃孵育2~3 min,4℃ 12000 r/min 离心15 min,取上清液至新的Eppendorf 管,加异丙醇(05 ml异丙醇/ml TRIzol),15℃~30℃孵育样品10 min,4℃12000 r/min 离心10 min,弃上清液,75%乙醇洗涤沉淀一次(至少1 ml 75%乙醇/ml TRIzol),4℃ 7500 r/min 离心5 min,弃乙醇,空气干燥5~10 min,加DEPC处理水溶解RNA,80℃保存备用。若长期保存,加入25倍体积乙醇,置80℃保存。

132 RNA样品鉴定 利用紫外分光光度计(日本SHIMADZU UV mini 1240)上测定RNA样品在波长为260 nm时的吸光度值(A值)。总RNA质量浓度计算公式:质量浓度(g/L)=A260 稀释倍数(120倍) 40/1000。

133 逆转录反应 取4 μl RNA模板做逆转录反应,仪器为PE9600PCR仪(美国Perkin Elmer公司)。反应体系如下: 5 逆转录buffer 4 μl,上游引物(10pM/μl)04 μl,下游引物 (10pM/μl)04 μl,dNTPs(25 mM)02 μl,MMLV(10U/μl)1 μl,DEPC水 10 μl,RNA模板4 μl。总体积: 20 μl。逆转录buffer成分:50 mM TrisHCl(pH80), 50 mM KCl, 4 mM MgCl2, 10 mM DTT。反应条件:37℃ 1 h,然后95℃ 3 分钟。

134 MUC5AC扩增引物及荧光探针(中山大学达安基因公司) 上游引物(外引物)5TGA CGG ACC TGG ATG TGG T3。下游引物(外引物)5TGT CAT TCC CGT AGC AGT AGG A3。扩增片段180bp。上游引物(内引物)5TGC GTC CCA CGA CAT CTG3。下游引物(内引物)5CAG GTG AAT GGG CAC ATG TG3。扩增片段 63bp。荧光探针 5FAMATC GAT TGG AGA GGC CGG ACC GTAMRA3。135 检测MUC5AC的样本按以下反应体系和反应条件进行 用外引物进行定性PCR:样本按以下反应体系进行: 5 定性PCR buffer(美国ABI公司)5 μl,上游引物F(外)(10pM/μl)05 μl,下游引物R(外)(10pM/μl)05 μl,dNTPs(25 mM)(Sigma公司)04 μl,Taq 酶(美国ABI公司)15 μl,cDNA5 μl, ddH2O 121 μl,总体积: 25 μl。 PCR buffer成分:10 mM TrisHCl(pH80), 50 mM KCl, 2 mM MgCl2。反应条件为:93℃ 3 min;然后93℃ 1 min,55℃ 1 min,72℃ 1 min,共15循环;72℃ 5 min。用内引物进行荧光定量PCR:样本按以下反应体系进行: 5 定量PCR buffer(美国ABI公司)10 μl,上游引物F(内)(10pM/μl)1 μl, 下游引物R(内)(10pM/μl)1 μl, dNTPs(25 mM)(Sigma公司)05 μl,荧光探针(10pM/μl)1 μl,Taq酶(美国ABI公司)15 μl,定性产物5 μl, ddH2O 30 μl。总体积: 50 μl。PCR buffer成分:10 mM TrisHCl(pH80), 50 mM KCl, 2 mM MgCl2。反应条件为:93℃ 3 min,然后93℃ 45 s,55℃ 45 s,共40循环。荧光定量仪为PE 7000全自动荧光定量PCR仪(美国Perkin Elmer公司)。反应结束后,由电脑自动分析荧光信号并将其转换为MUC5AC的起始拷贝数及Ct值(Ct值为每个反应管内的荧光信号达到设定的域值时所经历的循环数)。结合RNA的浓度,将荧光定量PCR结果(拷贝/μL cDNA)进行换算,得出待测样本MUC5AC的RNA表达量(拷贝/μg cDNA)。

14 统计学方法

数据均以(x±s)表示,采用SPSS90进行数据处理,采用t检验,P

2 结果

21 阳性标准品的荧光定量标准扩增曲线和荧光定量标准曲线

MUC5AC阳性标准品的荧光定量标准扩增曲线、荧光定量标准曲线见图1,图2。

22 培养的鼻黏膜上皮细胞MUC5ACmRNA定量表达

在培养的鼻黏膜上皮细胞上检测到MUC5ACmRNA的表达,IL1β刺激组MUC5ACmRNA定量表达为 (460±189) 108拷贝/μg,对照组为(250±140) 107拷贝/μg,两组比较差异具有统计学意义(t=4423,P

3 讨论

研究表明多种因素影响呼吸道上皮细胞黏蛋白MUC5AC的表达:中性白细胞弹性蛋白酶(neutrophil elastase)通过蛋白激酶C、活性氧族、TNFα转换酶的级联反应诱导气道上皮细胞过量产生MUC5AC[4];IL4通过诱导cAMP 应答元件结合蛋白(cAMP response elementbinding protein,CREB)磷酸化而上调MUC5AC基因表达[5];神经调节蛋白1β1(neuregulin 1bet al)通过调节原代培养人支气管上皮细胞中杯状细胞的形成,且以时间和剂量依赖方式上调MUC5AC的表达[6];脂多糖(lipopolysaccharides,LPS)诱导MUC5AC表达增加,是通过依赖Rac1的基质金属蛋白酶9(matrix met alloproteinase 9,MMP9)分泌和活化后使NCIH292 细胞黏蛋白MUC5AC表达增加[7];IL8不仅在两组人呼吸道衍生的细胞株(A549 和 NCIH292)以时间和浓度依赖方式上调MUC5AC的表达,而且还上调正常分化的原代人支气管上皮细胞MUC5AC的表达水平[8]。Kim等[9]在培养的人鼻上皮细胞中加入IL13,结果表明IL13对MUC5AC的表达和分泌具有抑制作用,而Zhao J等[10] 研究却发现IL13通过促进15脂肪氧化酶1(15Lipoxygenase1,15LO1)的活化导致人支气管上皮细胞黏蛋白MUC5AC的表达增加。

IL1β 是在局部和全身炎症反应中起核心作用的细胞因子,能诱导其他炎症细胞因子、趋化因子、粘附分子、急性时相蛋白和组织重建酶等的合成。KIM等[11]研究发现IL1β以剂量依赖方式上调NCIH292呼吸道上皮细胞MUC5AC的mRNA和蛋白表达,而Gray等[12] 研究表明在高分化的人气管支气管黏膜上皮细胞中,IL1β以时间和剂量依赖方式增加MUC5AC的蛋白分泌,MUC5AC的mRNA水平表达增高在IL1β开始刺激1~4 h,4 h后MUC5AC的mRNA表达恢复正常,但MUC5AC的蛋白分泌持续增高至少72 h。Seong等[13]在培养的人鼻上皮细胞中加入炎症介质混合物(TNFα、IL1β、IL4、LPS和PAF),发现MUC5AC的mRNA表达下调;本研究结果却表明IL1β刺激鼻黏膜上皮细胞24 h后, MUC5AC的mRNA表达增高P

本研究结果表明IL1β能上调鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC5ACmRNA的表达,然而,IL1β通过何种途径调节粘蛋白MUC5AC基因的表达和蛋白的分泌仍有待进一步研究。

参 考 文 献

[1] 黄雪琨,李源,,等慢性鼻鼻窦炎炎性黏膜中黏蛋白MUC5AC的表达中国医师杂志,2010,12(9):11981201.

[2] Nonoyama T, Harada T, Shinogi J, et al Immunohistochemical localization of cytokines and cell adhesion molecules in maxillary sinus mucosa in chronic sinusitisAuris Nasus Larynx, 2000, 27(1):5158.

[3] 黄雪琨,李源,王涛,等 IL1β上调人鼻黏膜上皮细胞黏蛋白MUC2和MUC5BmRNA的表达临床耳鼻咽喉头颈外科杂志, 2010,24(14):632635.

[74] Shao MX, Nadel JA Neutrophil elastase induces MUC5AC mucin production in human airway epithelial cells via a cascade involving protein kinase C, reactive oxygen species, and TNFalphaconverting enzyme J Immunol,2005,175(6):40094016.

[5] Kim CH,Kim KE,Yoon, JH,et al.Upregulation of MUC5AC gene expression by IL4 through CREB in human airway epithelial cells.J Cell Biochem,2009, 108(4):974981.

[6] Kettle R, Simmons J, Schindler F, et al Regulation of neuregulin 1bet alinduced MUC5AC and MUC5B expression in human airway epithelium Am J Respir Cell Mol Biol,2010,42(4):472481.

[7] Binker MG, BinkerCosen AA, Richards D, et al.LPSstimulated MUC5AC production involves Rac1dependent MMP9 secretion and activation in NCIH292 cellsBiochem Biophys Res Commun,2009, 386(1):124129.

[8] Bautista MV, Chen Y, Ivanova VS, et al.Rose MCIL8 regulates mucin gene expression at the posttranscriptional level in lung epithelial cellsJ Immunol,2009,183(3):21592166.

[9] Kim CH, Song KS, Koo JS, et al IL13 suppresses MUC5AC gene expression and mucin secretion in nasal epithelial cells Acta Otolaryngol, 2002,122(6):638643.

[10] Zhao J, Maskrey B, Balzar S, et al Interleukin13induced MUC5AC is regulated by 15lipoxygenase 1 pathway in human bronchial epithelial cellsAm J Respir Crit Care Med,2009, 179(9):782790.

[11] Kim YD, Kwon EJ, Park DW, et al Interleukin1beta induces MUC2 and MUC5AC synthesis through cyclooxygenase2 in NCIH292 cellsMol Pharmacol, 2002,62(5):11121118.

[12] Gray T, Coakley R, Hirsh A,et al Regulation of MUC5AC mucin secretion and airway surface liquid metabolism by IL1beta in human bronchial epithelia Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2004, 286(2):320330.

[13] Seong JK, Koo JS, Lee WJ, et al Upregulation of MUC8 and downregulation of MUC5AC by inflammatory mediators in human nasal polyps and cultured nasal epithelium Acta Otolaryngol, 2002, 122(4):401407.